Туба для транспортировки посевов угольная среда aims

Добавил пользователь Владимир З.
Обновлено: 19.09.2024

Среда для переноса вирусов (VTM) — это питательное вещество, используемое для переноса и поддержания жизнеспособности образцов (вирусов) в лабораторию для идентификации и дальнейшей обработки образца.

Транспортные среды для вирусов особенно важны, поскольку они более лабильны, чем другие инфекционные агенты.
Вероятность успешного выделения увеличивается, когда временной интервал между сбором и инокуляцией культуры меньше и когда образец содержит как можно больше вирусных частиц.
Чтобы максимально увеличить количество вируса в образце, забор образцов следует проводить на ранней стадии болезни пациента.
Успешная и надежная изоляция вирусов может быть достигнута при использовании подходящей транспортной среды.
Количество выделений также увеличивается, когда образцы вирусов отправляются либо в местную лабораторию, либо в референс-лабораторию.

Принцип вирусной транспортной среды (VTM)

Вирусные агенты широко различаются по составу, стабильности, структуре, морфологии и размеру. Вирусы с неплотной оболочкой, полученные из образцов человека, обычно более лабильны, чем вирусы с плотной оболочкой без оболочки.
Поскольку они неустойчивы к условиям окружающей среды, жизнеспособность этих вирусов должна быть защищена с помощью различных решений.
Некоторые вирусы в оболочке, такие как вирусы простого герпеса (HSV), удивительно стабильны в незамороженном состоянии при помещении в подходящую среду хранения. Однако большинству вирусов требуется более низкая температура.
Инфекционность вирусов со временем снижается, и, как правило, скорость распада зависит от температуры, поэтому стабильность повышается за счет охлаждения.
Таким образом, вирусные транспортные среды готовятся с целью обеспечения соответствующих условий температуры, pH и питательных веществ.
Компоненты подходящей вирусной транспортной среды выбираются для создания изотонического раствора, содержащего белки для защиты вирусной структуры, антибиотики для контроля микробного загрязнения и один или несколько буферов для контроля pH.
Среды для переноса вирусов готовятся с целью поддержания жизнеспособности вирусной культуры или образцов для таких тестов, как тест амплификации нуклеиновых кислот (NAAT), при одновременном предотвращении высыхания образца.

Состав вирусной транспортной среды (VTM)

Идеальная среда для переноса вирусов должна обладать многими из следующих характеристик;

Это сохранит активность вируса даже при комнатной температуре.
Он будет нетоксичным для клеточных культур и не заслонит проявление вирусных цитопатических эффектов.
Он будет иметь длительный срок хранения (в замороженном или незамороженном состоянии).
Он может применяться как для выделения культур, так и для прямых тестов, таких как иммуноферментный анализ или иммунофлуоресценция .

Для достижения всех вышеупомянутых характеристик вирусные транспортные среды обычно содержат защитный белковый компонент, антимикробные агенты для предотвращения вероятности заражения и буферы для поддержания pH раствора.

Некоторые VTM также содержат дополнительные ионы и минералы, которые помогают поддерживать жизнеспособность таких образцов.

Использование вирусной транспортной среды (VTM)

Среды для переноса вирусов используются для сбора и транспортировки образцов, содержащих вирусы.
Они также используются для поддержания жизнеспособности других организмов, таких как микоплазма, хламидии и уреаплазма.
VTM также помогают максимизировать количество вирусных частиц в образце.
Жидкие транспортные среды используются в основном для транспортировки тампонов или материалов, попавших в среду из тампона для сбора.
Это облегчает сбор и транспортировку образцов в местах, где нет холодильного оборудования.

Ограничения вирусной транспортной среды (VTM)

Некоторый рост загрязняющих веществ может наблюдаться в течение длительного периода транспортировки.
После транспортировки образец следует как можно скорее засеять соответствующей средой. Для получения оптимальных результатов промежуток времени между сбором образца и посевом на культуральную среду должен быть сокращен до минимума.
Некоторые вирусы могут быть более лабильными, чем другие, и VTM могут быть столь же эффективными.
Некоторые антибиотики и химические вещества, используемые в VTM, могут изменять pH раствора, что влияет на жизнеспособность организма.

Оформите заявку на сайте, мы свяжемся с вами в ближайшее время и ответим на все интересующие вопросы.

Транспортные среды широко используются в лабораторной практике. Они дают возможность получить надежные результаты даже в условиях длительного хранения и транспортировки биопроб. Для понимания принципов работы широкоизвестной транспортной среды Эймса (Amies) мы предлагаем Вам ознакомиться с ее физико-химическими характеристиками.

Правильный забор и транспортировка микроорганизмов критично важны для их восстановления и определения в культуре при последующем посеве. Если патогенные микробы погибают на преаналитическом этапе исследований, достоверность анализов падает, что сильно искажает их результаты. Для поддержания жизнеспособности чувствительных микроорганизмов (например, рода Neisseria) после их забора до лаборатории Стюартом была разработана одноименная транспортная питательная среда. После ее модификации Эймсом этот состав стал одним из самых широко используемых сегодня.

Классическая формула Стюарта

Модифицированный состав Эймса

pH 7.4 ± 0.2 при 25°C

рH 7.2 ± 0.2 при 25°C

Главное отличие среды Эймса от оригинальной среды Стюарта состоит в том, что глицерофосфат был заменен неорганическим фосфатным буфером. Из-за того, что колиформные организмы и некоторые другие грамотрицательные палочки метаболизируют глицерофосфат в среде Стюарта, их количество в бакпосевах из ран, горла, фекальных образцов увеличивалось, что искажало количественные результаты анализов.

Также Эймсом было показано, что для поддержки жизнеспособности штаммов Neisseria gonorrhoeae концентрация NaCl 0,3 г/л является оптимальной. Ионы Са2+ и Mg2+ были добавлены в состав среды, так как считается, что они регулируют проницаемость клеточной стенки бактерий и таким образом влияют на их выживаемость.

Стюарт обнаружил, что выживаемость Neisseria gonorrhoeae резко увеличивалась при взятии мазков палочками с углем. Проблема была в том, что из-за черной угольной пыли они не пользовались популярностью среди пациентов. Эймс предложил оригинальное решение: добавить активированный уголь непосредственно в транспортную среду.

Выживаемость N. gonorrhoeae при 22°C [1] вне среды:

85 штаммов

С углем

Без угля

Время

К-во выживших штаммов

и в транспортных средах:

100 штаммов

Среда Стюарта

Среда Amies

Time

К-во выживших штаммов

Активированный уголь благодаря большой удельной поверхности обладает высокой адсорбционной способностью. Таким образом, роль угля в высокой выживаемости бактерий в среде Эймса состоит в адсорбции молекул веществ, токсичных для микроорганизмов.

Концентрация агара в среде Эймса была немного увеличена по сравнению с классической формулой среды Стюарта, поскольку присутствие частиц угля негативно влияло на гелеобразующие свойства агара. Также из-за наличия угля Эймс убрал из оригинального состава транспортной среды метиленовый синий, который раньше использовался в качестве редокс-индикатора.

В итоге, во многих исследованиях было показано высокую эффективность использования транспортной среды Стюарта с модификациями Эймса для поддержания даже таких прихотливых микроорганизмов как Haemophilus influenzae, Streptococcus pneumoniae, Streptococcus pyogenes and Corynebacterium diphtheriae [2, 3].

Сегодня на украинском рынке выбор транспортных сред достаточно широкий. Мы предлагаем Вам серию заметок, которые помогут Вам лучше разобраться в особенностях их состава и применения. Если же у Вас возникают вопросы, касающиеся использования транспортных сред, квалифицированные специалисты компании Sente-Lab будут рады Вам помочь.

1. Amies C. R. A modified formula for the preparation of Stuart's transport medium //Canadian Journal of Public Health/Revue Canadienne de Sante'e Publique. – 1967. – P. 296-300.

2.Barry A. L., Fay G. D., Sauer R. L. Efficiency of a transport medium for the recovery of aerobic and anaerobic bacteria from applicator swabs //Applied microbiology. – 1972. – Vol. 24. – №. 1. – P. 31-33.

3.Bartlett J. G. et al. Anaerobes survive in clinical specimens despite delayed processing //Journal of clinical microbiology. – 1976. – Vol.. 3. – №. 2. – P. 133-136.

Тупферы с транспортной средой Stuart (Стюарта). Базовая транспортная среда, полужидкий агар-гель, бедный питательными веществами, что позволяет сохранить максимальное количество живых бактерий и при этом не допустить их размножения. Применяется для транспортировки различных патогенных микроорганизмов, например, Neisseria gonorrhoeae, Heamophilus influenzae, Corynebacterium diphteriae, Trichomonas vaginalis, Streptococcus pneumonie, Salmonella sp., Shigella sp. и др.

Тупферы с транспортной средой Amies (Эймса). Среда Эймса представляет собой модификацию среды Стюарта, где глицерофосфат, являющийся метаболитом ряда энтеробактерий, заменен неорганическим фосфатом. Также среда содержит кальций и магний, что позволяет сохранить проницаемость стенок бактерий. Применяется для транспортировки таких патогенных микроорганизмов, как Neisseria sp, Heamophilus sp, Corynebacteria, Streptococcus pneumonie, Escherichia coli, Klebsiella pneumonia.

Тупферы с транспортной средой Amies (Эймса) с активированным углем. Добавление активированного угля позволяет нейтрализовать токсичные для некоторых микроорганизмов вещества и повышает жизнеспособность штаммов со сложными питательными потребностями.

Тупферы с транспортной средой Cary Blair (Кэри-Блэйра). Среда Кэри-Блэйра также является модификацией среды Стюарта. Среда содержит тиогликолят натрия, который способствует созданию низкого окислительно-восстановительного потенциала и имеет слабощелочную рН, что снижает закисление среды и предотвращает гибель клеток. Применяется для транспортировки таких патогенных микроорганизмов, как Salmonella spp. Shigella spp. Vibrio spp. Campylobacter spp. Pseudomonas spp, Escherichia coli и др. Рекомендованы к использованию для взятия, транспортировки и хранения ректальных и фекальных проб.

Все транспортные системы для взятия мазков Rustech стерилизованы радиацией. Запрещено хранение тупферов при температуре выше 25°С. Пробирки со средами непригодны для замораживания.

Размер палочки:
длина х ∅,

(мм)

Размеры
тампона

(мм)

Состав материала:
тампон / рукоятка

Цена за шт.
с НДС

Тупферы для транспортировки проб без среды и с транспортными средами

Тупфер (сваб) - стерильный зонд-тампон сохраняющий стерильность в пробирке - предназначен для взятия образцов биологического, цитологического материала с неповрежденной кожи и открытых поверхностей тела и их последующей, безопасной транспортировки в лабораторию для анализа в ограниченные сроки (до 5 часов).
Например зонд для мазков используется при транспортировки проб внутри медучреждения, при отборе и транспорте проб, взятых на вызове у больного, или при экстренной доставке проб из медучреждения в ближайшую контрольную лабораторию.
Главным преимуществом зонда-тампона в пробирке - является отсутствие использования дополнительных нестандартных, в т. ч смонтированных вручную, средств предохранения, взятого материала от посторонней контаминации, высыхания и т.д. Тупфер (сваб) состоит из герметичной пластиковой пробирки из прозрачного полипропилена и длинного (15 см.) шпателя с хлопковым/вискозным тампоном на конце.
Различают стерильные тупферы для мазков со средой (Amies, Amies c углем, Cary Blair, Stuart) или без среды, деревянным, алюминиевым или пластиковым зондом, длинным и коротким зондом-тампоном. Комбинация "деревянный зонд/хлопковый аппликатор" - оптимальна для посева бактериологических суспензий на чашки Петри с агаром. Хлопковый аппликатор прочно соединен с зондом, на что даже не влияет хранение зонда в течении ночи в растворе NaCl.
Длина пробирки и зонда - 150 мм, диаметр пробирки - 12 мм.
Выбор стержня микробиологического тампона (зонда, тупфера):
Деревянный стержень (аппликатор, зонд) - благодаря тому, что дерево обладает высокой термической устойчивостью, тампон с деревянным стержнем может обрабатываться в автоклаве (при 121 °С), а также позволяет брать материал из горячих зон (пищевая промышленность); не желательно использовать для отбора проб для диагностики вирусных инфекций и микоплазмы.
Пластиковый стержень (аппликатор, зонд) - состоит из полистирола - инертного нетоксичного биологически нейтрального материала - подходит для общих анализов.
Алюминиевый стержень (аппликатор, зонд) - главным образом благодаря своей прочности и упругости используется для взятия проб из ушных и носовых полостей, глаз или уретры, также данный стержень отлично подходит для применения в педиатрии.
Выбор материала головки микробиологического тампона:
Хлопок - обладает высокой гигроскопичностью, благодаря чему наиболее удобен для взятия смывов; менее пригоден для взятия проб для исследования вирусов и хламидий.
Вискоза - производное целлюлозы, нетоксична для организма и наиболее часто используется для проведения микробиологических анализов.
Выбор транспортной среды:
Среды используется для сохранения и транспортировки клинического материала.

Среда Stuart (Стюарта) голубая крышка - представляет собой полужидкий, бедный питательными веществами субстрат для сохранения и транспортировки широкого спектра патогенных микроорганизмов, таких как Neisseria gonorrhoeae, Heamophilus influenzae, Corynebacterium diphteriae, Trichomonas vaginalis, Streptococcus pneumonie, Salmonella sp., Shigella sp. и др. Добавка активированного угля помогает нейтрализовать вещества, токсичные для некоторых возбудителей. Бактериальные культуры сохраняют жизнеспособность до 48 часов при температуре 15-22°С.

Среда Amies (Эймса или Амиес) голубая крышка - представляет собой модификацию базовой транспортной среды Stuart, в которой глицерофосфат заменен неорганическим фосфатом, поскольку глицерофосфат является метаболитом некоторых энтеробактерий (Escherichia coli, Klebsiella pneumonia, и т.д.). Пригодна для поддержания жизнеспособности таких микроорганизмов, как Neisseria sp, Heamophilus sp, Corynebacteria, Streptococcus pneumonie, Escherichia coli, Klebsiella pneumonia. В среду добавлены кальций и магний для поддержания проницаемости бактериальных клеток. Добавка активированного угля (пробирка с черной крышкой) помогает нейтрализовать вещества, токсичные для некоторых возбудителей. Бактериальные культуры сохраняют жизнеспособность до 48 часов при температуре 15 - 22 °С.

Среда Кэри-Блэра (Cary-Blair) без угля (красная крышка) - представляет собой модификацию базовой транспортной среды Stuart, в которой было меньше питательных веществ, низкий окислительно-восстановительный потенциал и высокое значение рН. В этой среде минимум питательных веществ, чтобы сохранить максимальное количество живых бактерий без размножения. Тиогликолят натрия введен в состав среды для создания низкого окислительно-восстановительного потенциала. Среда имеет слабощелочное значение рН, что минимизирует гибель бактериальных клеток вследствие закисления среды. Транспортная система со средой Кари-Блэйра в полистироловой пробирке рекомендуется для сбора, транспортировки и хранения фекальных и ректальных проб, содержащих Salmonella spp., Shigella spp., Vibrio spp., Campylobacter spp., Pseudomonas spp., Escherichia coli и другие микроорганизмы. Бактериальные культуры гарантированно сохраняют жизнеспособность до 48 часов при t° 15-22 °C.
Транспортные системы хранить при температуре не выше 25°C
Все транспортные среды которые находятся внутри пробирки подвержены ЗАМОРАЖИВАНИЮ при температуре ниже 0 ºС. Поэтому хранить и транспортировать ВСЕ Тупферы (свабы) с любыми средами необходимо только при окружающей температуре выше 0 ºС.
Срок годности стерильных тупферов для мазков со средой: от 18 месяцев до 5 лет, со дня стерилизации
Упаковка: в полиэтиленовых пакетах по 1/20/150 шт.

Производители:
"Zhejiang Gongdong Medical Technology Co. Ltd", Китай
"Ningbo Greetmed Medical Instruments", Китай
"Yancheng Huida Medical Instruments", Китай
"Ningbo HI-Tech Unicmed", Китай
"MEUS" / "Aptaka", Италия
"ОЛДАНС", Россия (ОСТАТКИ)

Транспортные среды для вирусов особенно важны, поскольку они более лабильны, чем другие инфекционные агенты.
Вероятность успешного выделения увеличивается, когда временной интервал между сбором и инокуляцией культуры меньше и когда образец содержит как можно больше вирусных частиц.
Чтобы максимально увеличить количество вируса в образце, забор образцов следует проводить на ранней стадии болезни пациента.
Успешная и надежная изоляция вирусов может быть достигнута при использовании подходящей транспортной среды.
Количество выделений также увеличивается, когда образцы вирусов отправляются либо в местную лабораторию, либо в референс-лабораторию.