Среда анаэробная для прямого посева крови и биосубстратов

Добавил пользователь Алексей Ф.
Обновлено: 19.09.2024

string(3) "223" ["Catalogue_ID"]=> string(1) "1" ["Parent_Sub_ID"]=> string(3) "218" ["Subdivision_Name"]=> string(89) "МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ ВЕНОЗНОЙ КРОВИ" ["Template_ID"]=> string(1) "2" ["ExternalURL"]=> NULL ["EnglishName"]=> string(48) "mikrobiologicheskie-issledovaniya-venoznoy-krovi" ["LastUpdated"]=> string(19) "2022-02-02 18:21:34" ["Created"]=> string(19) "2017-11-27 15:13:37" ["LastModified"]=> string(19) "2022-02-02 18:21:34" ["LastModifiedType"]=> string(1) "5" ["Hidden_URL"]=> string(98) "/vidy-analizov/mikrobiologicheskie-issledovaniya/mikrobiologicheskie-issledovaniya-venoznoy-krovi/" ["Read_Access_ID"]=> string(1) "1" ["Write_Access_ID"]=> string(1) "3" ["Priority"]=> string(1) "5" ["Checked"]=> string(1) "1" ["Edit_Access_ID"]=> string(1) "3" ["Checked_Access_ID"]=> string(1) "3" ["Delete_Access_ID"]=> string(1) "3" ["Subscribe_Access_ID"]=> string(1) "0" ["Moderation_ID"]=> string(1) "1" ["Favorite"]=> string(1) "0" ["TemplateSettings"]=> NULL ["UseMultiSubClass"]=> string(1) "1" ["UseEditDesignTemplate"]=> string(1) "0" ["DisallowIndexing"]=> string(1) "0" ["Description"]=> NULL ["Keywords"]=> NULL ["Title"]=> NULL ["ncSMO_Title"]=> NULL ["ncSMO_Description"]=> NULL ["ncSMO_Image"]=> NULL ["Language"]=> string(2) "ru" ["DisplayType"]=> string(7) "inherit" ["LabelColor"]=> NULL ["Cache_Access_ID"]=> string(1) "0" ["Cache_Lifetime"]=> string(1) "0" ["Comment_Rule_ID"]=> string(1) "0" ["SitemapPriority"]=> string(3) "0.5" ["SitemapChangefreq"]=> string(5) "daily" ["IncludeInSitemap"]=> string(1) "1" ["ShowInTheTopMenu"]=> string(1) "1" ["ShowInTheTopSubMenu"]=> string(1) "1" ["HasBorder"]=> string(1) "0" ["H1"]=> NULL ["Disease"]=> NULL ["_nc_final"]=> int(1) ["_db_inherit_Template_ID"]=> string(1) "2" ["_db_inherit_Read_Access_ID"]=> string(1) "1" ["_db_inherit_Write_Access_ID"]=> string(1) "3" ["_db_inherit_Edit_Access_ID"]=> string(1) "3" ["_db_inherit_Checked_Access_ID"]=> string(1) "3" ["_db_inherit_Delete_Access_ID"]=> string(1) "3" ["_db_inherit_Moderation_ID"]=> string(1) "1" ["_db_inherit_LastModifiedType"]=> string(1) "5" ["_db_inherit_SitemapPriority"]=> string(3) "0.5" ["_db_inherit_Language"]=> string(2) "ru" ["_db_inherit_IncludeInSitemap"]=> string(1) "1" ["_db_inherit_SitemapChangefreq"]=> string(5) "daily" ["_db_inherit_DisallowIndexing"]=> string(1) "0" > -->

Обнаружение анаэробной флоры при гнойно-воспалительных процессах.

Анаэробные микроорганизмы составляют абсолютное большинство нормальной микрофлоры человеческого тела. Но при определенных условиях они становятся причиной тяжёлых гнойно-воспалительных заболеваний.

Вне зависимости от локализации очага они имеют общие характерные клинические проявления, обусловленные гнилостным характером поражения, газообразованием. Большинство анаэробных инфекций эндогенны и чаще всего поражают органы места их естественного обитания анаэробов желудочно-кишечный тракт, мочеполовая система, верхние дыхательные пути. Только точная диагностика позволяет обосновать рациональную терапию и ликвидировать потенциально смертельно-опасную инфекцию.

Выделяемые возбудители: бактероиды, вейлонеллы, эубактерии, пептострептококки, актиномицеты, фузобактерии, клостридии, превотеллы, гемеллы, бифидобактерии, порфиромонас, пропионобактерии.

аспираты из полостей (например, полости матки), биологические жидкости из брюшной, плевральной полостей, гнойное содержимое из абсцессов и флегмон;
кусочки тканей при миозитах и мионекрозе (путем погружения кусочка вглубь угольной среды с помощью прилагаемого к ней тампона), отделяемое со дна язв;
желчь;
семенная жидкость (секрет простаты).

Исследование проводится до начала лечения антибактериальными препаратами. Одновременно с посевом на анаэробы рекомендовано назначить посев на микрофлору в аэробных условиях (тесты № 446 или № 465 или № 472 или № 474 и т. д. в зависимости от локализации процесса), сделать мазок на стекле отдельным стерильным тампоном и назначить микроскопическое исследование (тест № 445). В случае если исследование проводится с целью выявления актиномицетов и клостридий, об этом обязательно делается запись на направительном бланке.

Гнойная инфекция глубоких тканей: внутрибрюшной абсцесс, абсцесс лёгкого, эмпиема плевры, абсцессы в полости малого таза, подкожные абсцессы, инфекция культи после ампутации, абсцесс предстательной железы, конъюнктивит, инфекция аортальных шунтов.
Холецистит, вызываемый клостридиальной инфекцией.
Инфекция кожи и мягких тканей: целлюлит, параректальный абсцесс, диабетические язвы стоп.
Гнойный миозит.
Клостридиалъный мионекроз (газовая гангрена).
Клостридиальная септицемия.
Клостридиальное инфицирование матки (особенно после септического аборта), толстой кишки или желчевыводящих путей.
Периодонтальный абсцесс.

Интерпретация результатов исследований содержит информацию для лечащего врача и не является диагнозом. Информацию из этого раздела нельзя использовать для самодиагностики и самолечения. Точный диагноз ставит врач, используя как результаты данного обследования, так и нужную информацию из других источников: анамнеза, результатов других обследований и т.д.

Даётся информация об отсутствии или наличии роста. В случае положительного результата определяется чувствительность к антибиотикам.

Использование для транспортировки многих образцов биоматериала (гной, кишечное содержимое и т.п.) обычных питательных сред является, зачастую, серьезной ошибкой, поскольку в них идет быстрое размножение менее требовательных сапрофитных микроорганизмов. Физиологический раствор, который часто применяют для этой цели, не обеспечивает поддержания стабильных уровней редокс–потенциала и рН, а это, в свою очередь, существенно ограничивает жизнеспособность многих патогенных бактерий.

В настоящее время в клинике в качестве транспортных сред (консервантов) используются различные по составу композиции с разной степенью питательной ценности. Использование той или иной их них определяется соответствующими инструкциями, методическими рекомендациями и указаниями, в том числе утвержденными Минздравом РФ.

Это могут быть буферные растворы, содержащие только минеральные соли –– изотонический раствор хлорида натрия или фосфатно-буферный раствор, а также консерванты, содержащие органические вещества –– буферно-глицериновый солевой раствор, глицериновый консервант, 0,15%-ная пептонная вода, буферно-казеиново-дрожжевая среда.

Состав этих композиций следующий:

Калия дигидрофосфат 0,45 г

Динатрия гидрофосфат 5.34 г

Вода дистиллированная 1000 мл

Буферный глицерино-солевой раствор

Натрия хлорид 4,2 г

Дикалия гидрофосфат 3,1 г

Калия дигидрофосфат 1,0 г

Глицерин нейтральный 300 мл

Вода дистиллированная 700 мл

Натрия хлорид 0,85% раствор 1000 мл

Глицерин нейтральный 500 мл

Динатрия гидрофосфат 20% раствор 150 мл

0,1% пептонная вода

Вода дистиллированная 100 мл

Пептон бактериологический 0,1 г

Натрия хлорид 0,5 г

Калия нитрат 0,1 г

Натрия бикарбонат 0,2 г

Гидролизат казеина 2,0 г

Экстракт пекарских дрожжей 5,0 мл

Фосфатно-буферный раствор до 1000 мл

Так для транспортировки энтеробактерий в качестве консервантов рекомендуется использовать физиологический раствор, глицериновый и фосфатно-буферный растворы. Инструкция по лабораторной диагностике кампилобактериоза предусматривает использование для этих целей, кроме физиологического раствора, 0,1%-ную пептонную воду (от 3 до 48 ч.) или тиогликолевую среду для контроля стерильности (до 3 суток).

Следует отметить, что охлаждение до 4 о С позволяет значительно удлинить сроки транспортировки образцов на этих средах: в физиологическом растворе –– до 24 часов, в 0,1% пептонной воде –– до 72 часов и на тиогликолевой среде для контроля стерильности –– до 5 – 7 суток. При исследовании материала на наличие иерсиний глицериновые консерванты не пригодны. В этом случае исследуемый материал хранят при 4 – 8 о С 7 – 15 дней в фосфатно-буферном растворе или буферно-казеиново-дрожжевой среде.

Известно несколько десятков сред, которые потенциально могут быть использованы как транспортные. Однако большинство из них не отвечают одному из двух обязательных требований, которые и определяют пригодность среды именно как транспортной . Транспортная среда, с одной стороны, должна обеспечивать сохранение жизнеспособности микроорганизма, причем не менее 8 – 12 часов при комнатной температуре, и, в то же время, обязана предупредить или в значительной степени лимитировать размножение микроорганизмов.

Последнее особенно важно. Необходимо сохранить жизнеспособность той части патогенной микрофлоры, которая вне хозяина быстро гибнет, особенно при условии конкурентного роста менее требовательных микроорганизмов. Как уже отмечено, эта ситуация встречается очень часто, если исследуется раневое отделяемое, кишечное содержимое, мокрота, мазки из зева и некоторые другие биосубстраты. Облигатно анаэробные бактерии, пневмококки, гемофильные бактерии, нейссерии и многие другие микроорганизмы трудно выделить из биоматериала, если параллельно идет процесс интенсивного размножения сапрофитных бактерий или более жизнестойких болезнетворных микроорганизмов. Кроме того, гибель требовательных бактерий определяется созданием неблагоприятных для них условий, таких как неблагоприятные рН, окислительно-восстановительный потенциал, наличие или отсутствие свободного кислорода, а также действие антимикробных метаболитов, которые при определенных условиях могут образовывать актиномецеты, псевдомонады, эшерихии и другие содержащиеся в образце микроорганизмы.

Опыт создания и использования транспортных питательных сред велик и формально велика их номенклатура. Однако фактически в мировой практике стабильно используют только две транспортные среды, которые именуют по фамилиям их создателей: среда Эймса и среда Кери-Блейра, и которые являются наиболее универсальными транспортными средами для сохранения подавляющего большинства видов бактерий. Среда Эймса предназначена для широкого круга бактерий, среда Кери-Блейра для кишечных микроорганизмов.

Среда Кери-Блейра была предложена разработчикам в 1954 году. За прошедший длительный период ее рецептура фактически не менялась. Не вызывало разночтений и назначение среды –– изначально оно трактовалось как сохранение микроорганизмов при транспортировании с акцентом на микроорганизмы кишечника.

Натрия хлорид 5,0 г

Динатрия гидрофосфат 1,1 г

Кальция хлорид 0,1 г

Натрия тиогликолят 1,5 г

Вода дистиллированная до 1000 мл

Микроорганизмы кишечника многообразны, они включают представителей резидентной и транзиторной микрофлоры. Последняя в свою очередь может включать самые разнообразные бактерии и грибы, в т.ч. сапрофитные. В то же время, практика микробиологических служб клинических учреждений нацелена на выделение определенного круга микроорганизмов кишчника, прежде всего представителей семейства энтеробактерий (шигеллы, сальмонеллы), реже т.н. неферментирующих грамотрицательных бактерий, кишечных кокков и дрожжеподобных грибов.

Транспортная среда Кери-Блейра предупреждает гибель микробных клеток, сохраняет их жизнеспособность, но при этом препятствует размножению. Эти свойства среды обеспечиваются ее компонентным составом. Низкая питательная ценность и, прежде всего, отсутствие источников азота и углерода, как ключевых элементов развития популяции, ограничивает процессы роста и размножения микроорганизмов.

Процедура использования этой среды заключается в следующем: расплавленную среду Кери-Блейра разливают в стерильные пробирки по 6 – 9 мл. Объем среды в пробирках определяется техникой посева. При посеве мазка, взятого тампоном на тампонодержателе, достаточен небольшой столбик среды –– 6 мл. При прямом посеве биоматериала (без тампона) объем среды в пробирке увеличивают. В таком виде среду можно длительно хранить при температуре 2 – 8 о С.

Биологический материал погружают в столбик среды таким образом, чтобы он не оставался на ее поверхности. После этого пробирку с засеянной средой помещают в контейнер и направляют в лабораторию.

Среда Кери-Блейра сохраняет жизнеспособность требовательных бактерий около суток, после чего отмечают постепенную гибель клеток. Поэтому пересев с транспортной среды на обогащенные, дифференциально-диагностические или иные питательные среды необходимо проводить в максимально доступные сроки. Вместе с тем, есть данные о том, что сальмонеллы в этой среде сохраняют жизнеспособность несколько месяцев.

Среда Эймса используется как транспортная для широкого круга микроорганизмов самых разнообразных биологических субстратов (гной, раневое отделяемое, мокрота, СМЖ и др.), кроме кала. Среда Эймса может быть с углем и без него:

Натрия хлорид 3,0 г

Динатрия гидрофосфат 1,05 г

Калия дигидрофосфат 0,2 г

Калия хлорид 0,2 г

Кальция хлорид 0,1 г

Магния хлорид 0,1 г

Натрия тиогликолят 1,0 г

(как необязательный компонент) 10,0 г

Вода дистиллированная до 1000 мл

Уголь добавляют в среду Эймса для сорбции микробных метаболитов, негативно влияющих на высокочувствительные патогенные микроорганизмы. В частности, это условие особенно важно для сохранения жизнеспособности гонококков.

Техника посева на среду Эймса такая же, как и на среду Кери-Блейра.

Противоречиво мнение о пригодности среды Эймса для транспортировки биосубстратов с облигатно-анаэробными бактериями. Безусловно, наличие низкого редокс-потенциала, который обеспечивается тиогликолятом натрия, а также столбик полужидкого агара, в который погружается биоматериал, ограничивают контакт микроорганизмов с атмосферным кислородом и поступление его в среду в растворенном виде, что может способствовать сохранению жизнеспособности ряда видов облигатно-анаэробных бактерий (наиболее демонстративны в этом отношении клостридии). Однако среда не обеспечит длительного сохранения тех облигатных анаэробов, которые высоко чувствительны к кислороду (например, некоторых видов бактероидов).

Кроме отмеченных выше, имеется широкий перечень транспортных сред, применяемых для транспортирования определенных видов микроорганизмов. Наиболее строгие требования предъявляются к транспортированию материала, подлежащего бактериологическому исследованию на наличие неспорообразующих анаэробных микроорганизмов. Эти бактерии быстро погибают при контакте с кислородом воздуха, что заставляет использовать для транспортирования материала сосуды, заполненные инертным газом. Так, например, хорошо известна жидкая обогащенная среда под инертным газом с гемином и витамином К для прямого посева крови и жидких биосубстратов. Она служит одновременно транспортной средой и средой для культивирования анаэробных бактерий, включая строгих анаэробов

Натрия глицерофосфат 10,0 г

Натрия тиогликолят 1,0 г

Кальция хлорид 0,1 г

Налидиксовая кислота 0,04 г

Панкреатический перевар казеина 20,0 г

Натрия хлорид 2,5 г

Дикалия гидрофосфат 1,5 г

Натрия тиогликолят 0,5 г

Натрий сернистокислый 0,2 г

Цефалотин 0,02 г

Ванкомицин 0,02 г

Амфотерицин В 0,002 г

Триметоприм 0,002 г

Полимиксин В 3000 ЕД

Приведенная пропись мало чем отличается от состава других питательных сред для кампилобактерий (см.заключительную главу). Очевидно, что разработчики среды сделали акцент, в первую очередь, на селекционирующем действии антибиотиков, сохранив, в целом, состав среды, достаточный для поддержания жизнеспособности многих микроорганизмов.

Такой же принцип использован в транспортной среде для хламидий. Кроме того, в ней учтена возможность применения для селекции осмотического фактора (дано на литр).

Дикалия гидрофосфат 2,1 г

Калия дигидрофосфат 1,1 г

Сыворотка крови крупного

рогатого скота 50,0 мл

Ванкомицин 0,1 г

Стрептомицин 0,05 г

Нистатин 25000 ЕД

Антибиотики и сыворотку асептично вводят в стерильную питательную среду перед ее разлитием во флаконы и пробирки.

Существует ряд достаточно сложных по составу транспортных питательных сред для нейссерий, микоплазм и их сочетаний преимущественно в биосубстратах, полученных из мочеполового тракта. Некоторые варианты рассматриваются как транспортные среды для требовательных бактерий в целом, но особенно для нейссерий. Пропись одной из них, принадлежащей к большой группе т.н. Transgrow Medium, приведена далее (дано на литр).

Гемоглобин 10,0 г

Панкреатический перевар казеина 7,5 г

Натрия хлорид 5,0 г

Кукурузный крахмал 1,5 г

Дикалия гидрофосфат 4,0 г

Калия дигидрофосфат 1,0 г

Витамин В 12 0,001 г

Тиамин пирофосфат 0,001 г

П-Аминобензойная кислота 0,0002 г

Антибиотическая добавка 10,0 мл

Антибиотическая добавка включает ряд антибиотиков, призванных придать среде селективные свойства. Имеется ряд предложений, ни одно из которых в полной мере, естественно, не может обеспечить гарантированное подавление роста сопутствующих микроорганизмов. В разных источниках наиболее часто упоминают следующий состав (на литр среды добавляют 10 мл раствора антибиотиков).

Полимиксин В 0,0075 г

Ванкомицин 0,0035 г

Триметоприм 0,0035 г

Нистатин 12500 ЕД

В заключение следует еще раз подчеркнуть, что несмотря на большое число предложенных прописей транспортных сред, в микробиологической (медицинской) литературе наиболее часто упоминают среды Эймса и Кери-Блейра. Ряд авторов считает приемлемой среду Стюарта, которая, фактически, является предшественницей двух других. Среда Эймса большинству авторов представляется предпочтительней, чем среда Стюарта.

ГЛАВА 8. ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ И ИДЕНТИФИКАЦИИ ЭНТЕРОБАКТЕРИЙ

Среди возбудителей заболеваний человека энтеробактерии относятся к числу относительно нетребовательных микроорганизмов. Они способны давать рост на различных базовых питательных средах, используемых в микробиологических исследованиях. Однако семейство Enterobacteriaceae достаточно обширно; оно объединяет разные по своим свойствам бактерии. Кроме того, те области человеческого тела, где многие представители семейства являются объектом естественного обитания или паразитирования, обильно населены резидентной микрофлорой. Вот почему питательные среды, используемые при работе с энтеробактериями, в первую очередь решают задачу их селективного выделения и бактериологической диагностики. Это характерно как для отечественной, так и зарубежной практики.

Согласно многим отечественным методическим рекомендациям и указаниям, в том числе одобренных Минздравом, как обязательные при бакдиагностике энтеробактерий предложено использовать среды обогащения, среды для селективного выделения и дифференциации. Их перечень приведен в таблице. Названы те среды, которые освоены отечественными производителями, а также те из них, чье внедрение в микробиологическую практику признано перспективным.

Отечественные рекомендации в принципиальном плане мало отличаются от каждодневной практики применения питательных сред за рубежом. Питательные среды для энтеробактерий сконструированы таким образом, чтобы использовать ростовые особенности отдельных родов и видов и их способность конвертировать тот или иной субстрат. В следующей таблице 7 выборочно обобщены те свойства энтеробактерий, которые учтены и успешно реализованы в питательных средах для дифференциации микроорганизмов этого семейства.

Согласно рекомендациям Всемирной организации здравоохранения (1990 г.) в бактериологических лабораториях для работы с энтеробактериями рекомендованы следующие питательные среды:

транспортные среды –– Эймса, или Кери-Блейра, или Стюарта;

базовые среды – кровяной агар, агар на переваре сои (tryptic soy agar);

Заслуживает упоминания еще один зарубежный опыт.

В практике работы микробиологов США при выделении энтеробактерий из кишечного содержимого предложено использовать следующие группы питательных сред.

Как транспортную –– среду Кери-Блейра.

Дифференциально-диагностические : агар МакКонки и ЕМВ-агар (с эозином и метиленовым голубым).

Умеренно селективные : гектоен-энтеро агар, SS-агар (шигелла-сальмонелла агар), XLD-агар (с ксилозой, лизином и дезоксихолатом).

Высоко-селективные среды: агар с бриллиантовым зеленым и висмут-сульфит агар.

Естественно, что все перечисленное не исключает применения базовых питательных сред, прежде всего питательного агара с добавлением бараньих эритроцитов.

Назначение транспортной среды очевидно. Вторая группа сред позволяет отдифференцировать культуры, ферментирующие лактозу, от лактозонегативных. Следующая (умеренно селективная среда) обеспечивает рост сальмонелл и шигелл, в то время как рост других энтеробактерий частично или полностью подавляется. Последняя группа предназначена для выделения сальмонелл, но рост шигелл на них не гарантирован.

Питательные среды, наиболее часто используемые при выделении

Краткий курс лекций по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии Часть первая. Общая микробиология, вирусология и иммунология

. и др. Специальные питательные среды для культур клеток. Используются разнообразные синтетические вирусологические питательные среды сложного состава .

Методические указания для самостоятельной работы студентов под руководством преподавателя Тема: Возбудители инфекций, передающихся половым путем.

. . Параллельно проводится высев на соответствующие питательные среды для выделения и идентификации культуры. 4. . 2011. - 448 с., т.1 Зверев В.В., Бойченко М. Н. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология: в 2 т.: учебник. - М.: ГЭОТАР .

Разработка и применение биологических моделей для изучения хронической туберкулезной инфекции 03. 02. 03 микробиология 03. 01. 06 Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)

. -исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г. Н. Габричевского . высевов на плотные питательные среды, для дальнейшей работы был . А.В. Штанников , С.Ф. Бикетов // Проблемы медицинской и экологической биотехнологии (Сб. тез. докладов .

. Под редакцией доктора медицинских наук, профессора, зав. каф. микробиологии ГБОУ ВПО СОГМА . . Посев почвенной болтушки на среду Китта-Тароцци. Питательные среды для анаэробов, методы культивирования и выделение .

. верите? Почитайте учебник для медицинских Вузов по специальности «Здоровый . Санта-Русь, известным практикующим микробиологом А.С.Бессережновым. Знаете почему . не только служит отличной питательной средой для восстановления нормальной микрофлоры, но .

Преаналитические требования

Подготовка к исследованию:

При взятии материала из раны стерильным ватным тампоном кожу вокруг раны предварительно обрабатывают спиртом или другим антисептиком, некротические массы, детрит и гной удаляют стерильной салфеткой. Взятие материала производят стерильным тампоном круговыми вращательными движениями от центра к периферии поверхности раны. Следует пользоваться коммерческими транспортными системами со средой Amies с активированным углем. При наличии в ране дренажей для активной аспирации отделяемого последнее отсасывают шприцем и в количестве 1-2 мл помещают в стерильную пробирку. Кусочки тканей, гной, промывную жидкость из дренажа также берут в стерильные транспортные контейнеры для объемных материалов при соблюдении всех правил асептики.

Условия хранения и транспортировки:

При использовании транспортных сред: При Т= +18°С. +20°С – до 48 часов (комнатная температура) Нативный материал: При Т= +18°С. +20°С – 1-2 часа (комнатная температура) При Т= +2°С. +8°С – 4 часа (холодильник)

Стабильность аналитов

при температуре +2°С. +8°С - стабилен 72 часа, при температуре +20°С. +25°С - стабилен 24 часа, замораживать запрещено

Клиническая информация о тесте

Анаэробные бактерии составляют абсолютное большинство нормальной микрофлоры человеческого организма, однако при определенных условиях они могут вызывать гнойно-воспалительные заболевания. Анаэробная инфекция развивается, как правило, в закрытых ранах, абсцессах, в некротизированной мышечной ткани, глубоких трофических язвах и т. д., поскольку кислород для анаэробных микроорганизмов губителен. Наиболее распространенные клинические признаки анаэробной инфекции: отделяемое с гнилостным запахом, газообразование в ране и локализация очагов поражения вблизи слизистых оболочек

Интерпретация результатов

Интерпретация проводится врачом с учетом клинических проявлений. Положительный результат: - выделение представителей патогенной флоры свидетельствует об этиологическом факторе выделенного возбудителя в клинической картине. При положительном результате осуществляется постановка чувствительности к антибактериальным препаратам. R-возбудитель резистентен (устойчив) к антибактериальному препарату, S-возбудитель чувствителен к антибактериальному препарату, I- возбудитель умеренно устойчив к антибактериальному препарату. Выявление условно-патогенной флоры и ее значимость в развитии заболевания зависит от количества выделенного возбудителя для данной локализации. Отрицательный результат: - отсутствие патогенной флоры - норма; - присутствие условно- патогенной флоры в количестве, не превышающем диагностического значения - норма для данной локализации.

Читайте также:

Среда анаэробная для прямого посева крови и биосубстратов

Питательные среды, наиболее часто используемые при выделении

Похожие документы:

Краткий курс лекций по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии Часть первая. Общая микробиология, вирусология и иммунология

Методические указания для самостоятельной работы студентов под руководством преподавателя Тема: Возбудители инфекций, передающихся половым путем.

Преаналитические требования

Подготовка к исследованию:

Условия хранения и транспортировки:

Стабильность аналитов

Клиническая информация о тесте

Интерпретация результатов