Баллов 1 укажите частоту посевов для контроля эффективности стерилизации шовного материала
Добавил пользователь Дмитрий К. Обновлено: 19.09.2024
Стерилизация - это процесс уничтожения всех видов микробной флоры, в том числе их споровых форм, и вирусов с помощью физических или химических воздействий. Принято считать медицинское изделие стерильным, если вероятность его бионагрузки равна или менее 10 в степени -6. Стерилизации должны подвергаться медицинские изделия, контактирующие с кровью пациента, контактирующие с раневой поверхностью и соприкасающиеся со слизистой оболочкой и могущие вызвать нарушение ее целостности. Стерилизация -сложный процесс, для успешной реализации которого необходимы следующие требования:
- соответствующие упаковочные материалы;
- соблюдение правил упаковки медицинских изделий;
- соблюдение правил по загрузке стерилизатора упаковками с медицинскими изделиями;
- адекватное качество и количество стерилизуемого материала; соответствующая работа оборудования;
- соблюдение правил хранения, обращения и транспортировки простерилизованного материала.
Процесс стерилизации медицинских инструментов и изделий от момента окончания операции и до стерильного хранения или следующего применения включает в себя выполнение мероприятий в определенной последовательности. Все этапы должны быть строго соблюдены для обеспечения стерильности и длительного срока жизни инструментов. Схематично это можно представить следующим образом:
Отложить инструменты после использования Дезинфекция -> Механическая очистка инструмента -> Проверить на повреждения -> Промыть инструменты Сушка -> Упаковать в стерилизационную упаковку -> Стерилизация -> Стерильное хранение/применение. При применении стерилизационной упаковки (бумага, фольга или стерилизационные контейнеры) инструменты могут храниться в стерильном виде и позднее использоваться от 24 часов до 6 месяцев.
В лечебно-профилактических учреждениях применяется несколько форм организации стерилизации: децентрализованная, централизованная, осуществляемая в ЦСО, и смешанная. В амбулаторной стоматологической практике чаще применяется децентрализованная стерилизация (особенно в частных клиниках). Централизованная стерилизация характерна для районных стоматологических поликлиник и больших частных клиник. Децентрализованная стерилизация имеет ряд существенных недостатков, влияющих на ее эффективность. Предстерилизационная обработка изделий выполняется чаще всего вручную и при этом качество очистки изделий оказывается низким. Контроль за соблюдением технологии проведения стерилизации, правил упаковки, загрузки изделий в стерилизаторы и за эффективностью работы оборудования в условиях децентрализованной стерилизации затруднен. Все это приводит к снижению качества стерилизации. При применении централизованной формы стерилизации удается достичь более высоких результатов стерилизации за счет совершенствования существующих и внедрению новейших методов стерилизации (механизация мойки инструментов и медицинских изделий, облегчение работы среднего медицинского персонала и др.). В централизованном стерилизационном отделении выделяют: моечную, дезинфекционную, упаковочную и подразделение для стерилизации и раздельного хранения стерильных предметов. Температура воздуха во всех подразделениях должна быть от 18°С до 22°С, относительная влажность - 35-70%, направление потока воздуха - от чистых к относительно загрязненным зонам.
Методы стерилизации
Преимущества и недостатки различных методов стерилизации представлены в таблице.
Таблица. Преимущества и недостатки различных методов стерилизации
Все изделия перед стерилизацией подвергаются предстерилизационной очистке.
При стерилизации физическими методами (паровым, воздушным) изделия, как правило, стерилизуют упакованными в упаковочные материалы, разрешенные в установленном порядке к промышленному выпуску и применению в России. При паровом методе могут применяться стерилизационные коробки без фильтров и с фильтром. При воздушном методе, а также при паровом и газовом методах допускается стерилизация инструментов в неупакованном виде.
Паровой метод стерилизации
Таблица. Режимы и контроль паровой стерилизации
Воздушный метод стерилизации
Стерилизация при воздушном методе осуществляется сухим горячим воздухом температурой 160°, 180° и 200°С (табл.).
Таблица. Режимы и контроль стерилизации сухим горячим воздухом
Воздушным методом стерилизуют медицинские изделия, детали приборов и аппаратов из коррозионностойких металлов, стекла с пометкой 200°С, изделия из силиконовой резины. Перед стерилизацией воздушным методом изделия подвергаются предстерилизационной очистке и обязательно высушиваются в сушильном шкафу при температуре 85°С до исчезновения видимой влаги. Полный цикл составляет до 150 минут. Преимущество стерилизации горячим воздухом по сравнению с паровым методом состоит в низкой себестоимости оборудования. Недостатками являются: длинный полный цикл стерилизации (не менее 30 мин), опасность повреждения инструментов высокими температурами, невозможность стерилизации тканей и пластмасс, только один контрольный параметр - температура, высокие энергозатраты.
Гласперленовая стерилизация
Гласперленовая стерилизация осуществляется в стерилизаторах, стерилизующим средством в которых является среда нагретых стеклянных шариков при рабочей температуре 190-330°С. При стерилизации сухие инструменты помещают в среду раскаленных стеклянных гранул на глубину более 15 мм. Этим методом могут быть простерилизованы только инструменты, размер которых не превышает 52 мм, они должны быть целиком погружены в камеру на 20-180 с в зависимости от размера. После стерилизации изделия используются сразу по назначению. Высокая рабочая температура и невозможность полного погружения инструментов в стерилизующую среду ограничивают возможность стерилизации широкого ассортимента медицинских изделий.
Стерилизация газовым методом
Для газового метода стерилизации применяют смесь окиси этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1 : 2,5 соответственно (ОБ), окись этилена, пары раствора формальдегида в этиловом спирте, озон. Стерилизацию смесью ОБ и окисью этилена осуществляют при температуре не менее 18°С, 35°С и 55°С, парами раствора формальдегида в этиловом спирте при температуре 80°С. Перед газовой стерилизацией изделия после предстерилизационной очистки подсушивают до исчезновения видимой влаги. Удаление влаги из полостей изделий производят с использованием централизованного вакуума, а при его отсутствии с помощью водоструйного насоса, подсоединенного к водопроводному крану. При стерилизации ОБ и окисью этилена удаляют воздух до давления 0,9 кгс/см2. При использовании портативного аппарата после окончания стерилизации его выдерживают в вытяжном шкафу на протяжении 5 часов.
Озоном, вырабатываемым в озоновом стерилизаторе С0-01 -СПБ, стерилизуют изделия простой конфигурации из коррозионностойких сталей и сплавов, в неупакованном виде при температуре не более 40°С. Цикл стерилизации (выход на режим, стерилизация, дезактивация) составляет 90 минут. После стерилизации инструменты используют по назначению сразу без дополнительного проветривания. Срок сохранения стерильности изделий 6 часов, при соблюдении правил асептики. При упаковке в стерильную двухслойную х/б ткань срок стерильности составляет 3 суток, а при содержании в камере с бактерицидными облучателями - 7 суток.
Инфракрасное воздействие
Новые методы стерилизации нашли свое отражение в стерилизаторе инфракрасной стерилизации, предназначенном для стерилизационной обработки металлических медицинских инструментов в стоматологии, микрохирургии, офтальмологии и других областях медицины.
Высокая эффективность ИК-стерилизующего воздействия обеспечивает полное уничтожение всех исследованных микроорганизмов, в том числе таких как: S. epidermidis, S. aureus, S. sarina flava, Citrobacter diversus, Str. pneumonia, Bacillus cereus.
Быстрый, в течение 30 секунд, выход на режим 200±3°С, короткий цикл стерилизационной обработки - от 1 до 10 минут, в зависимости от выбранного режима, наряду с низкой энергоемкостью, несравнимы по эффективности ни с одним из применяемых до настоящего времени методов стерилизации. Стерилизатор ИК-стерилизации прост в эксплуатации, не требует специально обученных операторов, а сам метод относится к экологически чистым технологиям. В отличие от паровой, воздушной или гласперленовой стерилизации, при ИК-стерилизации отсутствует агрессивное воздействие стерилизующего агента (инфракрасного излучения) на режущий инструмент.
Ионизирующее излучение
Активно действующими агентами являются гамма-лучи. В ЛПУ ионизирующее излучение не используется для дезинфекции. Его используют для стерилизации изделий однократного применения при производстве в заводских условиях.
Стерилизация растворами химических средств
Данный метод применяют для стерилизации изделий, материалы которых не являются термоустойчивыми, и применение других официально рекомендуемых методов невозможно. Недостатком данного метода является то, что изделия нельзя стерилизовать в упаковке и по окончании стерилизации их необходимо промыть стерильной жидкостью (водой или 0,9% раствором натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может привести к вторичному обсеменению микроорганизмами простерилизованных изделий. Для химических средств применяют стерильные емкости из стекла, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом, металлов, покрытых эмалью. Температура растворов, за исключением специальных режимов применения перекиси водорода и средства Лизоформин 3000, должна быть не менее 20°С для альдегидсодержащих средств и не менее 18°С для остальных средств (табл.).
Таблица. Стерилизация растворами химических средств
Разъемные изделия стерилизуют в разобранном виде. Во избежание нарушения концентрации стерилизационных растворов, погружаемые в них изделия должны быть сухими. Цикл обработки составляет 240-300 минут, что является существенным недостатком метода. Кроме того, недостатком является высокая стоимость дезинфектантов. Преимущество - нет специального оборудования. Промытые стерильные изделия после удаления жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или после упаковки в двухслойную стерильную х/б бязь, помещают в стерильную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.
Все работы по стерилизации изделий проводятся в асептических условиях в специальных помещениях, подготавливаемых как операционный блок (квар-цевание, генеральная уборка). Персонал использует стерильную спецодежду, перчатки, очки. Ополаскивание изделий проводится в 2-3 сменах стерильной воды, по 5 минут в каждой.
Контроль эффективности стерилизации
Контроль эффективности стерилизации осуществляется физическими, химическими и бактериологическими методами.
К физическим методам контроля относятся: измерение температуры, давления и времени применения стерилизации.
К 1 классу отнесены индикаторы внешнего и внутреннего процесса, которые размещаются на наружной поверхности упаковки с медицинскими изделиями или внутри наборов инструментов и операционного белья. Изменение цвета индикатора указывает на то, что упаковка подверглась процессу стерилизации.
Ко 2 классу относят индикаторы, которые не контролируют параметры стерилизации, а предназначенные для применения в специальных тестах, например, на основании таких индикаторов оценивают эффективность работы вакуумного насоса и наличие воздуха в камере парового стерилизатора.
К 3 классу относятся индикаторы, при помощи которых определяется один параметр стерилизации, например, минимальная температура. Однако они не дают информации о времени воздействия температуры.
К 5 классу относят интегрирующие индикаторы, реагирующие на все критические параметры метода стерилизации.
Все операции с индикаторами - выемка, оценка результатов - осуществляются персоналом, проводящим стерилизацию.
Оценку и учет результатов контроля проводят, оценивая изменения цвета начального состояния термоиндикаторной метки каждого индикатора, сравнивая с цветовой меткой Эталона сравнения.
Если цвет конечного состояния термоиндикаторной метки всех индикаторов соответствует цветовой метке Эталона сравнения, это свидетельствует о соблюдении требуемых значений параметров режимов стерилизации в стерилизационной камере.
Допускаются различия в интенсивности глубины окраски термоиндикаторной метки индикаторов, обусловленные неравномерностью допустимых значений температуры в различных зонах стерилизационной камеры. Если термоиндикаторная метка хотя бы одного индикатора полностью или частично сохранила цвет, легко отличимый от цвета эталонного состояния, это свидетельствует о несоблюдении требуемых значений параметров режимов стерилизации в стерилизационной камере.
Индикаторы и Эталоны сравнения должны совпадать по номерам партий. Запрещается оценивать результаты контроля стерилизации, используя индикаторы разных партий.
Оценку соответствия изменения цвета термоиндикаторной метки в сравнении с Эталоном проводят при освещенности не менее 215 лк, что соответствует матовой лампе накаливания 40 Вт, с расстояния не более 25 см. Для проведения бактериологического контроля в настоящее время применяются биотесты, имеющие дозированное количество спор тест-культуры. Существующая методика позволяет оценивать эффективность стерилизации не ранее чем через 48 часов, что не позволяет применять уже простерилизованные изделия до получения результатов бактериологического контроля.
Биологический индикатор представляет собой препарат из патогенных споро-образующих микроорганизмов с известной высокой устойчивостью к данному типу стерилизационного процесса. Задачей биологических индикаторов является подтверждение способности стерилизационного процесса убивать устойчивые микробные споры. Это наиболее критичный и достоверный тест стерилизационного процесса. Применяются биологические индикаторы в качестве контроля загрузки: если результат положительный (микробный рост), то использовать данную загрузку нельзя и необходимо отозвать все предыдущие загрузки до последнего отрицательного результата. Для получения достоверного биологического ответа следует использовать только те биологические индикаторы, которые соответствуют международным стандартам ЕК 866 и ISO 11138/11135. При использовании биологических индикаторов возникают определенные трудности - необходимость наличия микробиологической лаборатории, обученного персонала, продолжительность инкубации многократно превышает длительность стерилизации, необходимость карантина (невозможность использования) простерилизованных изделий до получения результатов. Из-за указанных выше трудностей в применении биологического метода в амбулаторной стоматологической практике обычно используется физический и химический метод контроля эффективности стерилизации.
Источник: Особенности дезинфекции и стерилизации в амбулаторной стоматологии, Мороз Б.Т., Мироненко О.В. 2008г.
Материалы Второго научного симпозиума по значению биологических индикаторов для контроля стерилизации, состоявшегося в Москве 9 декабря 1998 г. М.М. Лившиц, М.И. Леви, А.П. Митюков, И.И. Корнев, В.А. Воронков, С.М. Савенко, Э.Б. Бутаева, Е.Е. Элиас
Испытательный лабораторный центр МГЦД,
ЦСО ЦКБ Медицинского центра Управления делами Президента РФ
Станция переливания крови КЗ г. Москвы
Сделана попытка увязать биологический контроль стерилизации с использованием простерилизованных медицинских изделий на базе двух ЦСО Москвы - ЦКБ Медцентра УДП РФ и Станции переливания крови. В каждом ЦСО ежедневно с помощью комплексных наборов проводился контроль паровой стерилизации, включающий в себя и проращивание биотестов после стерилизации непосредственно в ЛПУ силами сотрудников ЦСО. Проведение ежедневного биологического самоконтроля позволило выявить несколько неудовлетворительных циклов стерилизации. Показана возможность решения вопроса о судьбе изделий медицинского назначения после стерилизации. Частота контроля способствует более раннему выявлению технических неисправностей аппаратов. Это, в конечном итоге, позволит снизить процент внутрибольничных инфекций, связанных с неэффективной стерилизацией.
SIGNIFICANCE OF BIOLOGICAL CHECKING FREQUENCY FOR DETERMINATION OF STERILIZATION EFFICIENCY
М.М. Livshitz, M.I. Levi, A.P. Mityukov, I.I. Kornev, V.A. Voronkov, S.M. Savenko, E.B. Butaeva, Е.Е. Elias
Test laboratory centre MCCD,
Centralized Sterilization Dept. of Central Clinical Hospital of President's affairs Head office,
Blood transfusion Station, Moscow
An attempt was made to coordinate checking of sterilized medical instruments on bases of two CSD's - Central Clinical Hospital of President's affairs Head office Medical Center of FiFand Blood transfusion Station, Moscow. Each CSD worked out daily checking of results of steam sterilization with use of complex kits, including growing up of biotests by personnel of CSD's directly in medical organizations. Daily biological self checking allowed to reveal some unsatisfactory cycles of sterilization. Shown the ability to solve a problem of post sterilization destiny of medical instruments. Frequent checking contribute to earlier reveal of malfunction of sterilization machines. Finally, this fact allows to reduce sick rate of entire hospital infections, related to non-effective sterilization.
Общеизвестно, что биологический контроль является эффективным методом контроля стерилизации. По данным Федерального центра ГСЭН за 1997 г. в Российской Федерации неудовлетворительно работающие стерилизаторы выявлялись в 6 раз чаще при биологическом контроле, чем при контроле химическими индикаторами /1/.
Согласно приказу №254 МЗ СССР от 03.09.91 контроль биотестами стерилизующей аппаратуры должен осуществляться 1 раз в год. Испытательный лабораторный центр (ИЛЦ) МГЦД более 10 лет осуществляет контроль стерилизации биотестами. При этом процент неудовлетворительно работающих аппаратов для паровой стерилизации снизился с 10,0 до 5,6% в 1997 г /2/.
Стерилизующая аппаратура в ЛПУ, как правило, морально устарела или нуждается в обновлении в связи с окончанием срока годности. Поэтому важное значение приобретает частота планового контроля стерилизации центрами санэпиднадзора и особенно самоконтроль сотрудниками ЦСО.
В странах Западной Европы и Америки аппаратура находится на современном техническом уровне. Вместе с тем, фирмы-производители, например, финская фирма "Випак Медикал" рекомендует осуществлять контроль биотестами до 12 раз в год. Американская фирма "ЗМ" рекомендует осуществлять биологический контроль еженедельно, а оптимальным считает ежедневный биологический контроль.
ИЛЦ для контроля стерилизации выпускает комплексные наборы, а для проращивания биотестов после стерилизации - портативные термостаты. К набору прилагается паспорт с технической характеристикой, комплектом поставки и подробным описанием порядка работы. Использование набора обеспечивает возможность медицинским учреждениям, не имеющим своей бактериологической лаборатории, проведение самоконтроля стерилизующей аппаратуры.
От момента проведения биологического контроля до получения результата контроля проходит как минимум 2 суток - время проращивания биотестов. К этому моменту медицинские изделия, простерилизованные в данном цикле, обычно уже использованы по назначению. А ведь примерно в 6% случаев результат бывает неудовлетворительным. Получается странная ситуация: контроль стерилизации не увязывается с использованием изделий, подвергшихся стерилизации. На самом деле, использовать простерилизованные изделия возможно только в том случае, если стерилизация была эффективной (при проращивании биотестов после стерилизации не выявлено жизнеспособных спор). Для удовлетворения потребностей клиник в увязке с результатом биоконтроля стерилизации необходимо иметь небольшой запас медицинских изделий, превышающий имеющийся примерно на 10%.
Попытка увязать биологический контроль стерилизации с использованием простерилизованных медицинских изделий была предпринята на базе двух ЦСО Москвы - ЦКБ Медцентра УДП РФ и станции переливания крови. В каждом ЦСО ежедневно комплексными наборами проводился контроль паровой стерилизации, включающий в себя и проращивание биотестов после стерилизации непосредственно в ЛПУ. Контроль осуществлялся силами сотрудников ЦСО /3/.
Помимо этого, работа по ежедневному контролю стерилизации была проведена в автоклавной ИЛЦ на 3-х паровых стерилизаторах отечественного производства: ВК-75 и двух ГК-100-ЗМ. Было проведено 70 циклов стерилизации при 120°С и экспозиции 45 мин. при полной загрузке стерилизаторов. Контроль проводился пятью биотестами на цикл, в общей сложности использовано 350 тестов. Биотесты закладывались в контрольные точки в соответствии с "Методическими указаниями по контролю работы паровых и воздушных стерилизаторов" /4/. Не пророс ни один биотест.
Второй этап работы проводили в ЦСО ЦКБ Медцентра УДП РФ. Контролю подвергали паровые стерилизаторы фирмы "МММ" производства Германии выпуска 1989 и 1995 гг. с объемом камеры 750 л и стерилизаторы отечественного производства ГКД-560 "ЛАД" фирмы "РОС-МЕДЛАД" выпуска 1994 г. Это стерилизаторы нового поколения, в них вытеснение воздуха из камеры производится вакуумным способом.
Контроль биотестами осуществляли при 120°С в течение 20 мин и при 134°С в течение 5 мин. В работе было использовано 1064 биотеста. Данные контроля представлены в таблице 1.
| Режим стерилизации | Марка аппарата, №аппарата | Количество | Кол-во неудовлетворительных | |||
| температура, °С | время, мин. | циклов | биотестов | циклов | биотестов | |
| 120 | 20 | МММ-1 | 6 | 156 | - | - |
| МММ-1 | 13 | 169 | 4 | 6 | ||
| МММ-2 | 13 | 169 | 2 | 2 | ||
| 134 | 5 | МММ-1 | 5 | 130 | - | - |
| 120 | 20 | ГКД-560 "ЛАД" | 40 | 440 | - | - |
В аппаратах "МММ" было проконтролировано 37 циклов стерилизации. При бактериологическом контроле 5 циклов при 134°С и экспозиции 5 мин. биотесты не проросли. Из 32 циклов, проведенных при 120°С в течение 20 мин., 6 циклов сопровождались неудовлетворительными результатами. При этом, в одном цикле проросло 3 биотеста, в остальных - по одному. Медицинские изделия после неудовлетворительной стерилизации в клинику не поступали и подвергались повторной стерилизации с повторным биологическим контролем.
При проведении 40 циклов стерилизации на аппарате ГКД-560 "ЛАД" при использовании 440 биотестов неудовлетворительных результатов не выявлено.
Следующую серию опытов проводили на паровых стерилизаторах марки "ЦСУ-1000" выпуска 1991 и 1993 гг. московским заводом "Технолог", установленных в ЦСО станции переливания крови г. Москвы. Стерилизаторы трехкамерные, объем камеры 750 л. Контроль биотестами осуществляли каждый день при следующих режимах: 120°С в течение 45 мин. или 132°С при
экспозиции 20 мин. Контроль осуществлялся силами сотрудников ЦСО. Данные по контролю представлены в таблице 2.
| Режим стерилизации | Марка аппарата, №аппарата | Количество | Кол-во неудовлетворительных | |||
| температура, °С | время, мин. | циклов | биотестов | циклов | биотестов | |
| 120 | 45 | ЦСУ-1000 | 6 | 78 | 1 | 2 |
| 132 | 20 | ЦСУ-1000 | 10 | 130 | 2 | 4 |
Контроль стерилизации осуществлялся на двух установках ЦСУ-1000. На установке №1 неудовлетворительный результат получен в двух циклах стерилизации, а на установке №2 - в одном цикле. В камере №1 неудовлетворительные результаты получены в циклах, следующих один за другим в течение двух дней. В один из дней проводили стерилизацию при режиме 132°С в течение 20 мин., а на следующий день при режиме 120°С - 45 мин.
Получив подобные результаты, мы произвели ревизию камеры №1 и выявили неисправность - повреждение мембраны на запорном устройстве разгрузочной двери, в результате чего происходил подсос воздуха. После устранения неисправности биологический контроль не выявил биотестов с жизнеспособными спорами.
Станция переливания крови г. Москвы в последние годы осуществляет бакконтроль стерилизации с регулярностью один раз в две недели, но даже контроль такой частоты является недостаточным. При внеплановом контроле (ежедневном) удалось выявить неудовлетворительно работающий стерилизатор. Следовательно, частота контроля повышает возможность раньше выявить техническую или иную неисправности и тем самым повысить эффективность стерилизации. При этом надо отметить, что контроль стерилизации осуществлялся с эталонной загрузкой, следовательно, медицинские изделия после неэффективной стерилизации не использовались.
Таким образом, проведение ежедневного биологического контроля позволило выявить несколько неудовлетворительных циклов стерилизации. Данные проведенного биологического контроля в ЦСО станции переливания крови, ЦКБ Медцентра УДП РФ показывают, что частота контроля способствует более раннему выявлению технических неисправностей стерилизующей аппаратуры и тем самым повышает эффективность стерилизации. Частота биологического контроля позволит быстрее выявить неудовлетворительно работающую аппаратуру. Увеличение частоты контроля и самоконтроль позволит в конечном итоге снизить процент внутрибольничных инфекций, связанных с неэффективной стерилизацией.
Выводы
1. Показана возможность использования биологического контроля, проводимого силами ЛПУ, для решения вопроса о судьбе изделий медицинского назначения после стерилизации.
2. Ежедневный биологический контроль позволил выявить несколько неудовлетворительных циклов стерилизации.
3. Частота контроля способствует более раннему выявлению технических неисправностей аппаратов.
Литература
1. Информационный сборник статистических и аналитических материалов МЗРФ, Федеральный центр ГСЭН, М., 1998.
2. Леви М.И. Опыт внедрения бактериологического контроля паровой и воздушной стерилизации в Москве. Дезинфекционное дело, 1992, №1, с. 23.
3. Леви М.И., Бессонова В.Я., Лившиц М.М. Применение цветных питательных сред в процессе контроля стерилизации. Клиническая лабораторная диагностика, 1993, №2, с. 65.
4. Методические указания по контролю работы паровых и воздушных стерилизаторов. Утверждены МЗ СССР 28.02.91, №15/6-5, М., 1991.
6. Целью предстерилизационной очистки медицинского инструментария является:
а) уничтожение только патогенных микробов
б) удаление различных загрязнений и остатков лекарственных средств +
в) обезвреживают источник инфекции
7. Предстерилизационной очистке инструментария предшествует:
а) пастерилизация
б) стерилизация
в) дезинфекция +
8. При проведении предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения:
а) удаляют различные загрязнения +
б) обезвреживают источник инфекции
в) уничтожают вегетативные формы микроорганизмов
9. Инструменты, поступающие в ЦСО, должны быть:
а) вымытыми под проточной водой после их использования
б) стерильными
в) продезинфицированными +
10. Детергенты – это:
а) дезинфекционные средства
б) моющие средства +
в) кожные антисептики
11. Концентрация перекиси водорода в составе моющего раствора (%):
а) 3 +
б) 5
в) 7
12. Состав 1л моющего раствора с использованием 27,5% пергидроля при предстерилизационной обработке:
а) 14 мл пергидроля + 2,5 г CMC + до 1 л воды
б) 17 мл пергидроля + 5 г CMC + до 1 л воды +
в) 33 мл пергидроля + 5 г CMC + до 1 л воды
13. Для приготовления 1 л моющего раствора при предстерилизационной обработке инструментария необходимо взять 3% раствор перекиси водорода (в мл):
а) 160 +
б) 170
в) 130
14. Состав 1л моющего раствора с использованием 3% раствора перекиси водорода при предстерилизационной обработке:
а) 100 мл перекиси водорода + 10 г CMC и до 1 л воды
б) 220 мл перекиси водорода + 15 г CMC и до 1 л воды
в) 160 мл перекиси водорода + 5 г CMC и до 1 л воды +
15. Для приготовления 1 л моющего раствора при предстерилизационной обработке инструментария необходимо взять пергидроль 33% раствор (в мл):
а) 14 +
б) 18
в) 24
16. Виды дезинфекции:
а) однократная
б) очаговая и профилактическая +
в) влажная уборка
17. Стерилизация – это:
а) предупреждение попадания микроорганизмов в рану
б) удаление микроорганизмов с поверхности МИ
в) уничтожение вегетативных и спорообразующих микроорганизмов +
18. Режимы стерилизации паровым методом:
а) давление 1,1 атм. Темп. = 120 гр.С – 20 мин
б) давление 2 атм. Темп. = 132 гр. С – 20 мин +
в) давление 1,1 атм. Темп. = 120 гр.С – 60 мин
19. Основной режим стерилизации воздушным методом:
а) 120 гр. С – 40 мин
б) 180 гр. С – 60 мин
в) 180 гр. С -180 мин +
20. Время химической стерилизации МИ 6% раствором перекиси водорода:
а) Т – 20 гр. С – 40 мин
б) Т – 18 гр. С – 360 мин +
в) Т – 50 гр. С – 60 мин
II вариант.
1. Проба на качество предстерилизационной обработки:
а) азопирамовая +
б) никотинамидовая
в) бензойная
2. Гигиеническая обработка рук показана:
а) до и после снятия перчаток
б) после контакта с биожидкостями
в) перед инвазивными процедурами
3. Дезинфекция матраца, одеяла, подушки после выписки больного:
а) вытряхивание, выхлапывание
б) проветривание
в) обеззараживание в дезинфекционной камере +
4. Срок хранения стерильного материала в закрытом биксе:
а) 2 дня
б) 3 дня +
в) 3 месяца
5. Один из методов стерилизации:
а) капельный
б) переносной
в) воздушный +
6. Один из методов стерилизации:
а) жидкий
б) плазменный +
в) переносной
7. Один из методов стерилизации:
а) паровой +
б) газообразный
в) капельный
8. Обработка рук хирургов проводится:
а) после контакта с неповрежденной кожей пациента
б) до и после контакта с инфекционным больным
в) перед операционным вмешательством +
9. Выбор метода стерилизации зависит от:
а) конфигурации изделия
б) степени загрязненности изделия
в) особенностей стерилизуемого изделия +
10. Методами стерилизации являются:
а) сжигание, обжигание
б) химический +
в) кипячение в 2% растворе соды
11. Какие существуют виды дезинфекции?
а) местная
б) очаговая и профилактическая+
в) однократная
г) влажная уборка
12. Когда должна проводиться влажная уборка палат в ЛПУ?
а) не реже 2-х раз в день+
б) по просьбе пациентов
в) тогда, когда у санитарки есть время
г) частота влажных уборок не имеет значения
13. Отметьте способы и режимы стерилизации клизменных наконечников (пластмасса):
а) замачивание в 3% растворе хлорамина на 30 мин., высушить
б) паром под давлением при температуре 120о С, давление 1,1 атм. в течение 45 мин.+
в) паром под давлением при температуре 132о С, давление 2 атм. в течение 20 мин.
г) сухим жаром при температуре 180о С в течение 60 мин.
14. Какая должна быть укладка биксов для стерилизации?
а) рыхлой, чтобы проходил пар между слоями+
б) плотной, чтобы в бикс вместилось как можно больше стерилизуемого материала
в) плотность укладки бикса значения не имеет, самое главное – режим работы стерилизующей аппаратуры
15. Определите способы контроля работы стерилизующей аппаратуры при паровой стерилизации изделий из текстиля, стекла, металла:
а) мочевина, термоиндикаторная лента на 132о С+
б) бензойная кислота, сера, термоиндикаторная лента на 120о С
в) перекись водорода 4%
г) калия перманганат (кристаллы)
16. Выберите способы контроля работы стерилизующей аппаратуры при стерилизации изделий из латекса, резины, полимеров:
а) мочевина, термоиндикаторная лента на 132о С
б) бензойная кислота, сера, термоиндикаторная лента на 120о С+
в) фенолфталеин
г) азопирам
17. Отметьте самый точный способ контроля стерильности:
а) посев смывов на питательную среду (бактериологический анализ)+
б) термохимическая лента в зависимости от режима стерилизации
в) нет способов контроля стерильности
18. Что способствует распространению внутрибольничной инфекции?
а) Инвазивные процедуры;+
б) Осложненные заболевания;
в) Слабое материальное обеспечение лечебно-профилактического учреждения.
19. Как называется заболевание инфекционного характера, которым пациент заражается в процессе оказания медицинской помощи, а медицинский персонал в процессе оказания медицинских услуг?
а) Карантинным;
б) Внутрибольничным;+
в) Эндемичным.
20. Что такое артифициальный путь передачи?
а) Естественный через кровь;
б) Естественный контактно-бытовой;
в) Искусственный.+
Шовный материал применяется для наложения хирургических швов и перевязки отдельных анатомических структур в ране. Любое соприкосновение с раной, любое оперативное вмешательство должно быть свободно от бактерий и выполняться в стерильных условиях. Поэтому вопрос о стерилизации шовного материала является очень актуальным.
Для того чтобы не травмировать ткани при протягивании нити в ходе операции, вызывать минимальную местную воспалительную или аллергическую реакции, шовный материал должен иметь гладкую поверхность, обладать высокой прочностью и не растягиваться. Кроме того, он должен легко подвергаться стерилизации, не теряя при этом исходных свойств, а также обеспечивать формирование надежного узла. Под стерилизацией понимается уничтожение микроорганизмов и их спор с помощью физических и химических факторов.
Существует несколько методов стерилизации шовного материала, каждый из которых применяется для определенного вида нитей.
Для стерилизации нерассасывающихся нитей, изготовленных из синтетических материалов, таких как шелк, капрон, лавсан, перлон, а также из льна и хлопка обычно применяют автоклавирование. Этот метод заключается в следующем. Мотки шовного материала моют с мылом под краном, после чего прополаскивают и кипятят в дистиллированной воде в течение 15 минут. Затем их высушивают и помещают в автоклав на 20 минут под давлением 2 атм. Прошедший стерилизацию шовный материал хранят в 96% спирте в герметически закрытой стерильной емкости.
Методы стерилизации нерассасывающихся нитей, предложенные Кохером и Першиным, также получили широкое распространение в медицине. По методике Кохера мотки шелка помещают на 12 часов сначала в эфир, а потом еще на 12 часов в 70% этиловый спирт. Обезжиренные таким образом шелковые нити кипятят в течение 10 минут в растворе сулемы, после чего помещают в стерильную емкость и заливают 96% спиртом, который меняют каждые 7 дней. По методике Першина шелковые, хлопчатобумажные и синтетиче¬ские нити обезжиривают в течение 2-4 часов в эфире и стерилизуют в растворе диоцида в течение 2-4 часов. Стерильный шовный материал хранят также в слабом растворе диоцида.
Читайте также: