Посевы роста грибов не дали

Обновлено: 07.07.2024

Посев на Candida с определением чувствительности к антимикотическим препаратам — исследование, которое проводится для выявления родовой принадлежности грибов Candida и определения их чувствительности к противогрибковым препаратам.

Выделяемые возбудители: дрожжеподобные грибы (род Candida, Cryptococcus и другие).

Определение чувствительности к антибиотикам проводится при выявлении роста 10*4 и более кое/мл.

Дрожжевые грибы рода кандида — нередкий обитатель генитального тракта. В небольшом количестве эти грибы присутствуют на слизистых оболочках рта, желудочно-кишечного тракта, влагалища, не вызывая каких-либо клинических проявлений. При нарушении иммунитета, действия лекарств, ожогах, хирургических вмешательствах, у онкологических больных — они могут явиться причиной ряда заболеваний — стоматита, гнойных заболеваний, молочницы (бактериальный вагиноз), негонорейного уретрита, пневмонии у новорожденных, системного кандидоза (монилиаза).

Клинические проявления кандидоза
Клинические проявления кандидоза: у женщин — жжение и зуд в половых органах, творожистые выделения, боли при мочеиспускании; у мужчин — зуд и жжение, белый налет на головке полового члена и крайней плоти, боли при мочеиспускании.

Дополнительная информация: для сдачи посева на Candida с определением чувствительности к антимикотическим препаратам, необходимо иметь при себе паспорт.

  • подозрение на грибковую инфекцию и контроль после лечения.

Обследование женщин целесообразно проводить в первую половину менструального цикла, не ранее 5-ого дня. Допустимо обследование во второй половине цикла, не позднее, чем за 5 дней до предполагаемого начала менструации. При наличии патологических изменений, взятие материала проводится в день обращения. Накануне и в день обследования, пациентке не рекомендуется выполнять спринцевание влагалища. Не рекомендуется взятие биоматериала на фоне проведения антибактериальной терапии (общей/местной) и во время menses, ранее 24–48 часов после полового контакта, интравагинального УЗИ и кольпоскопии. Если для исследования берут соскоб из уретры, сбор материала проводят до или не ранее 2–3 часов после мочеиспускания.

Посев на микрофлору из влагалища с определением чувствительности к антибиотикам

Бактериальный посев микрофлоры влагалища – это определение состава микроорганизмов, населяющих половые органы женщины. Выяснение бактериальной флоры является залогом успешной антибиотикотерапии.

Посев на микрофлору из влагалища с определением чувствительности к антибиотикам в Сочи (Адлер)

Подготовка к исследованию:

  • Не рекомендуется сдавать материал во время приема антибактериальных препаратов, во время менструации
  • За 2-3 дня до сдачи материала следует прекратить местное лечение (кремы, мази, свечи)
  • В день сдачи материала не рекомендуется подмываться
  • За 1,5-2 часа до сдачи следует воздержаться от мочеиспускания

Тип биоматериала: Влагалищное отделяемое, мазок

Синонимы (rus): Бактериальный посев, посев на флору, посев на определение чувствительности флоры к антибиотикам

Синонимы (eng): Genitourinary tract Culture, Bacteria Identification and Antibiotic Susceptibility testing

Методы исследования: микробиологический

Единицы измерения: КОЕ/мл, возведенное в степень

Сроки выполнения: 3-5 дней

Что такое посев на влагалищную микрофлору?

В норме у половозрелой женщины облигатная влагалищная микрофлора находится в количественном и качественном равновесии, не позволяя патогенной флоре развиваться на женских половых органах. Биоценоз влагалища представлен анаэробными бактериями, в их число входят:

  • Грамположительные облигатные бактерии – лактобациллы, клостридии, бифидобактерии.
  • Грамотрицательные микроорганизы – вейлонеллы, бактероиды, фузобактерии.
  • Факультативные бактерии – гарднереллы, стафилококки/стрептококки, кандидобактерии, микоплазма.

В норме в женском влагалище присутствует около 45 видов микроорганизмов, а их общее количество составляет 107-109 колониеобразующих единиц в миллилитре (КОЕ/мл). Большую часть влагалищной флоры составляют лактобактерии. Снижение их количества влечет за собой рост условно-патогенной флоры, в результате чего развивается дисбиоз, который выражается неприятными симптомами – жжение, характерные выделения, сильный зуд.

Методика бактериологического посева основана на свойстве всех бактерий активно размножаться в питательной среде, что помогает легко выявить состав микрофлоры слизистой оболочки влагалища. При выявлении возможного возбудителя заболевания его перемещают на среды, пропитанные разными видами антибиотиков, и наблюдают за ростом бактерий.

В некоторых лабораториях используют дисковый метод – микроорганизмы высеивают на специальные диски, пропитанные противомикробными препаратами. Отсутствие роста микроорганизма на каком-то определенном диске означает высокую чувствительность к данному препарату, бурное размножение свидетельствует об обратном.

Метод бактериологического исследования с определением антибиотикочувствительности позволяет избежать бессмысленных назначений препаратов, что значительно ускоряет выздоровление и восстановление баланса микрофлоры.

Для чего назначают исследование?

  • Для выявления возбудителя гинекологического заболевания.
  • Выявление нарушения баланса микроорганизмов влагалища.
  • Выяснение чувствительности бактерий к лекарственным препаратам (подбор рациональной схемы лечения).
  • Диагностика неспецифических заболеваний репродуктивных органов женщины.

В каких случаях врач назначает анализ?

Бактериологическое исследование влагалищного отделяемого с определением антибиотикочувствительности показано в тех случаях, когда у женщины отмечаются симптомы воспалительного процесса – сильный зуд, нехарактерные выделения, жжение, боль при половом акте. Помимо этого, показанием к обследованию является отклонения в обычном гинекологическом мазке.

Расшифровка результатов анализа.

В заключение вносят данные о составе и количестве условно-патогенных микроорганизмов, их чувствительность к антибактериальным препаратам. Отдельным списком представлены антибиотики, которые были задействованы в исследовании. В норме во влагалищном отделяемом преобладают лактобациллы, условно-патогенная флора не обнаружена или не превышает значение в 104. Увеличение этого параметра свидетельствует о развитии бактериального вагиноза.

Россия, Краснодарский край,
г. Сочи, ул. Старонасыпная, 22.
Размещенная на сайте информация и прейскурант не являются публичной офертой.

Результат анализа мазка на флору подразумевает обычно формулировку - "хороший" или "плохой". Сдача его не представляет трудностей для пациентки, но чтобы провести забор и получить достоверный результат, гинекологу и врачу-лаборанту потребуется высокая квалификация. В противном случае расшифровка будет ошибочной, данные будут искажены. На качество влияет также предварительная подготовка женщины и правильность взятия материала. Далее расскажем, что отличает между собой плохой мазок и хороший, и что нужно делать для уточнения причин отклонений.

Результаты мазка

Врачом лаборантом при проведении мазка на флору у женщин в анализе выделения могут быть обнаружены следующие образования:

1. Плоский эпителий - слой клеток, выстилающий влагалище и шейку матки. В норме эпителий должен присутствовать. Отсутствие его в результате мазка свидетельствует об атрофии эпителиальных клеток.

2. Лейкоциты в анализе на флору у женщин - норма до 15 единиц в поле зрения (в мочеиспускательном канале до 5, во влагалище до 10 и в шейке матки до 15 единиц в поле зрения). Количество лейкоцитов в мазке у женщин резко возрастает при воспалении влагалища (кольпит, вагинит). Чем больше лейкоцитов, тем острее протекает заболевание. При остром воспалении значение этого показателя результата мазка на флору будет "до 100 в поле зрения" или "покрывают все поле зрения".

3. Палочки в анализе мазка на флору составляют нормальную микрофлору влагалища. Кроме палочек гинекологический мазок на флору не должен содержать других микроорганизмов.

5. Лептотрикс (Leptothrix) - анаэробная грамотрицательная бактерия. Чаще всего лептотрикс встречается при смешанных половых инфекциях - трихомониазе и хламидиозе, при кандидозе и бактериальном вагинозе. Определение его в мазках из влагалища должно настораживать врача и предусматривать дальнейшее более углубленное обследование женщины, чем просто анализ на флору.

6. Мобилункус - анаэробный микроорганизм, один из представителей транзиторной микрофлоры мочеполовых органов. Часто встречается у женщин с бактериальным вагинозом и кандидозом.

7. Трихомонада - простейший микроорганизм, представляет собой подвижный одноклеточный организм со жгутиком, вызывающий воспалительные заболевания мочеполовой сферы.

8. Гонококки (диплококки) - возбудители гонореи - в анализе мазка у здоровых пациенток не определяются.

Варианты взятия мазка на флору у женщин

Расшифровка хорошего мазка в на флору характеризуется наличием следующих показателей:

  1. Плоский эпителий - слой клеток, выстилающий влагалище и шейку матки. В нормальном мазке эпителий должен присутствовать. Если же эпителия не содержится, то у гинеколога есть основание предположить недостаток эстрогенов, избыток мужских половых гормонов, атрофию эпителиальных клеток.
  2. Лейкоциты - норма до 15 - 20 единиц, они препятствуют инфекции в гениталиях. Повышенные лейкоциты в мазке наблюдаются при воспалении (кольпит, вагинит). Чем их больше, тем острее протекает воспаление.
  3. Золотистый стафилококк в небольших количествах - норма. Значительное повышение может быть симптомом воспалительного процесса во влагалище, слизистой оболочки матки (эндометрит).
  4. Палочки составляют нормальную микрофлору влагалища. Кроме палочек, в хорошем мазке не должно быть других микроорганизмов.

Результаты мазка на флору может содержать патологические микроорганизмы, указывающие на наличие той или иной половой инфекции. В расшифровке врач-лаборант может указать следующие бактерии, характерные для "плохого" анализа мазка у женщин:

Как берется мазок на флору у женщины

Причины плохого мазка на флору и что делать дальше?


В данной статье приводится микробиологический спектр возбудителей отделяемого из околоносовых пазух у 86 детей с хроническим риносинуситом. Доминирующей микрофлорой при хронических риносинуситах у детей являются грамположительные кокки (53,5 %) и грамотрицательные палочки (39,6 %). Так же характерной особенностью было высевание в виде двухкомпонентных микробных ассоциаций. В 30,2 % случаях бактериологический посев положительных результатов не дал, что указывает на не бактериальную этиологию данной патологии или бесконтрольный прием химиопрепаратов пациентами.

Ключевые слова: хронический риносинусит, микробиоогический спектр, дети

Актуальность. В связи с неуклонным ростом заболеваемости и отсутствием четких критериев по многим вопросам диагностики и лечения актуальным является изучение проблемы хронического риносинусита (ХРС). В настоящее время ХРС является заболеванием с большим количеством предрасполагающих моментов, но без однозначно доказанной этиологии. Патогенез ХРС, несмотря на наличие большого количества работ по этому поводу, также до конца не изучен. Данные многих доказательных исследований значительно отличаются либо противоречат друг другу.

В последние годы предметом бурных дискуссий остается этиологическая роль бактериальной микрофлоры при ХРС, так долго являвшаяся неоспоримой. Гипотеза, предполагающая, что хронический воспалительный процесс в около носовых пазухах (ОНП) является следствием и логическим продолжением затянувшегося острого риносинусита, не находит убедительных подтверждений с позиций доказательной медицины. При одностороннем воспалительном процессе из здоровой половины носа может высеваться один и тот же возбудитель (как аэробы, так и анаэробы), что и из воспаленной пазухи [4].

Цель исследования: изучить особенности микробного спектра при хронических риносинуситах у детей.

Материалы иметоды исследования: в основу исследования положены данные обследования 86 детей больных ХРС, возраст детей варьировал от 3 до 14 лет. Среди больных было 32 мальчика и 54 девочки, средний возраст пациентов составил 8,5±3,75 лет. Группу контроля составили 20 практически здоровых детей.

Наряду с клиническими исследованиями у одних и тех же детей больных ХРС нами проводились микробиологические исследования. Для этого всем обследованным детям проводили промывание ОНП методом Проеца с введением 3–5 мл физиологического раствора. Полученный материал вносили в стерильные пробирки. Из которого затем в микробиологической лаборатории готовили серийные разведения и засевали на поверхность дифференциально-диагностических питательных сред: агар для анаэробов, среда эндо, молочно-солевой агар, среда Калина, кровяной агар, среда МРС-4, среда Сабуро, желточно-солевой агар, агар по Щукевичу и др. Большинство посевов культивировали в обычных условиях 18–24 часа, при температуре 37,0. По истечении указанных сроков, засеянные чашки вынимала из термостата, производили подсчет выросших колонии, определяли групповую и видовую принадлежность изолированных микроорганизмов. На основе данных микроскопии мазков, окрашенных по Грамму, определяли характер роста на селективных средах. Количество бактерий каждого вида выражали в lg KOE/мл.

Статистическая обработка данных проводилась с использованием стандартного пакета программ прикладного статистического анализа MS Excel для Windows XP и предусматривала вычисление среднеарифметического значения показателя, среднеквадратического отклонения. Оценка достоверности различия показателей проводилась с помощью параметрического критерия Стьюдента.

Результаты исследования. Основной причиной развития риносинусита у детей обследуемой группы явилась острая респираторная вирусная инфекция, ОРВИ предшествовала заболеванию в 34,5 % случаев, фактор переохлаждения стал причиной развития РС у 28 % больных, 37,5 % больных не смогли связать воспаление с какими — либо внешними причинами. Длительность заболевания ХРС была 16,2±2,8 дней, частота обострений от 1-го до 4-х раз в год, давность заболевания от 3-х до 10 лет.

При исследовании мазков из носового хода у больных с ХРС был получен рост различной микрофлоры, причем в 86 % случаев она была представлена аэробами и только в 8–10 % — анаэробами. Среди аэробных микроорганизмов преобладали S. aureus (36 %), коагулазонегативные стафилококки (19,8 %) и S. pneumoniae (17,4 %).

При ХРС у детей чаще всего высеивались микробные ассоциации 54,6 %, из них наиболее чаще других встречались двухкомпонентные.

Анализ видового состава отделяемого из ОНП у детей с ХРС показал, что превалирующей по суммарной частоте высеваемости микрофлорой являются грамположительные кокки (53,5 %), главным образом стафилококки (37,2 %). На втором месте — грамотрицательные палочки (39,6 %), преимущественно энтеробактерии. Редко из гнойного отделяемого выделялись грамположительные палочки (6,9 %).

Заключение. Таким образом, обобщая бактериологические исследования, отделяемого из ОНП у 86 больных детей с хроническим риносинуситом следует отметить, что в 30,2 % случаях бактериологический посев положительных результатов не дал, что указывает на небактериальную этиологию данной патологии или бесконтрольный прием химиопрепаратов пациентами. Доминирующей микрофлорой при ХРС у детей являются грамположительные кокки (53,5 %) и грамотрицательные палочки (39,6 %), реже встречаются грамположительные палочки (6,9 %). Так же характерной особенностью было высевание в виде двухкомпонентных микробных ассоциаций. Полученные данные свидетельствуют о том, что необходимо более тщательно подходить к назначению препаратов при лечении хронических риносинуситов у детей с учетом их активности по отношению к бактериальной флоре.

  1. Сакович А. Р. Синуситы: клинико-эпидемиологический анализ. //Военная медицина — 2009. — № 3. — С. 25–28.
  2. Bhattacharyya N. Clinical and symptom criteria for the accurate diagnosis of chronic rhinosinusitis. // Laryngoscope. — 2006. — N116(7). — Р. 1–22.
  3. Bhattacharyya N. Bacterial infection in chronic rhinosinusitis: A controlled paired analysis. // Am J Rhinol. — 2005. — N1(6). — Р.544–548.
  4. Lim M., Lew-Gor S., Darby Y. et al. The relationship between subjective assessment instruments in chronic rhinosinusitis // Rhinology. — 2008. — N 45(2). — Р.144–147.
  5. Plouin-Gaudon I., Clement S., Huggler E. et al. Intracellular residency is frequently associated with recurrent Staphylococcus aureus rhinosinusitis // Rhinology. — 2006. — N 44(4). — Р.249–254.

Основные термины (генерируются автоматически): ребенок, KOE, бактериологический посев, бесконтрольный прием, больной, доминирующая микрофлора, палочка, ребенок больных, среда, характерная особенность.

Читайте также: