Посев из гис на пт

Добавил пользователь Дмитрий К.
Обновлено: 19.09.2024

Бактериологический посев дает возможность получить рост разнообразных видов бактерий и кандиды, возбудителей инфекций урогенитального тракта женщины на специализированных питательных средах. Идентификация вида полученной микрофлоры проводится автоматически методом масс-спектрометрии с постановкой антибиотикограммы расширенного списка диско - диффузионным методом. К нормофлоре определение антибиотикочувствительности не производится, так как в этом случае не нужно проводить лечение. Если к полученному виду микрофлоры существует препарат бактериофага, то к нему производится тест на бактериофагочувствительность.

В каких случаях обычно назначают посев отделяемого урогенитального тракта?

при наличии острого и хронического воспаления урогенитального тракта женщины: полость матки, цервикальный канал, влагалище, уретра
контроль излеченности

Что именно определяется в процессе анализа?

Некоторые микроорганизмы, такие как: стафилококки, энтерококки, непатогенные виды коринебактерий и энтеробактерий могут в норме встречаться в составе биоценоза женских половых органов. Но количество этих микроорганизмов не должно превышать количество лактобактерий у женщин репродуктивного возраста. Следует помнить, что воспалительные заболевания могут быть вызваны микрорганизмами (вирусы, микоплазмы), не растущими в посеве. В этом случае могут понадобиться исследования методом ПЦР.

Что означают результаты теста?

Если микробиологический посев даст рост патогенного возбудителя или условно патогенных бактерий , то определение чувствительности к антибиотикам позволит врачу гинекологу подобрать антибактериальный препарат для терапии. В случаях не возможности применения антибиотиков для лечения инфекции, врач может использовать в терапии воспаления бактериофаг, к которому выявлена чувствительность.

Обычный срок выполнения теста:

Нужна ли специальная подготовка к анализу?

Важно выдержать 2 недели после приема антибиотиков и исключить местное применение антисептических средств до взятия материала на посев.

Подробнее про условия сдачи анализа можно узнать, выбрав способ взятия биоматериала.

Барнаул, ул. Попова, д. 113

Барнаул, просп. Строителей, д. 25

Барнаул, ул. Юрина, д. 186а, пом. Н2

Выберите требуемый вид биоматериала

Соскобы из урогенитального тракта не берутся в течение суток после местной терапии (свечи, мази, спринцевания), после полового контакта и во время менструации у женщин. После кольпоскопии, интравагинального УЗИ должно пройти 48 часов. В случае наличия признаков острого воспаления необходимость взятия мазка определяется лечащим врачом. Если исследование назначается для контроля излеченности, то взятие материала на микробиологические исследования не ранее,чем через 14 дней после окончания лечения.

Соскобы из урогенитального тракта не берутся в течение суток после местной терапии (свечи, мази, спринцевания), после полового контакта и во время менструации у женщин. После кольпоскопии, интравагинального УЗИ должно пройти 48 часов. В случае наличия признаков острого воспаления необходимость взятия мазка определяется лечащим врачом. Если исследование назначается для контроля излеченности, то взятие материала на исследование методом ПЦР возможно не ранее, чем через 28 дней после окончания приема антибиотиков, на микробиологические исследования не ранее,чем через 14 дней.

Взятие материала на исследование возможно только врачом соответствующей квалификации.

Накануне исследования не применять местные лекарственные препараты и процедуры, исключить половой акт. При взятии соскоба из уретры не мочиться в течение 1,5-2 часов до процедуры. Если исследование назначается для контроля излеченности, то взятие материала на исследование методом ПЦР возможно не ранее, чем через 28 дней после окончания приема антибиотиков, на микробиологические исследования не ранее,чем через 14 дней.

Оценка результатов посевов зависит от локуса, количества выделенных микроорганизмов, наличия монокультуры или ассоциации микроорганизмов. Наличие роста условно-патогенных микроорганизмов в титре более 10*4 КОЕ/мл оценивается как этиологически значимое. Результат оценивается с учетом клинической картины.

Если прямо в нормативных актах такое не прописано, то может это фигурирует в методических рекомендациях, книгах.

1. О каких методах ГИС (комплексе методов) идет речь (Wireline: в контроле за разработкой, в процессе бурения ; LWD)?

2. Какие задачи Вы планиурете этими методами решить?

1. О каких методах ГИС (комплексе методов) идет речь (Wireline: в контроле за разработкой, в процессе бурения ; LWD)?

2. Какие задачи Вы планиурете этими методами решить?

В процессе бурения, поисковая скважина, изучение геологического разреза. Имеются и терригенные и карбонатные пласты.

Стою на асфальте я в лыжи обутый.
Я так понимаю, что раз в процессе бурения, то это LWD. Тогда какие сроки проведения ГИС интересуют.

Комплекс ГИС в открытом стволе: РК, БК, МКЗ, стандартный каротаж и тд. и т.п
Какой срок допустим между вскрытием пласта и проведением ГИС, приборы ведь пока в долото не вставляют. С теми параметрами (скорость проходки, газопоказания. ) понятно, что непосредственно при бурении.

Вы ведете речь о сроке связанном с формированием \ расформированием т.н. "зоны проникновения" фильтратра раствора чтоли ? Не совсем понимаю, какие сроки Вам нужны. Какая связь между вскрытием пласта и сроком проведением ГИС Вас инетресует конкретно? Вскрыли пласт, зона проникновения образовалась, репрессия, бур. инструмент подняли, провели каротаж.
По поводу "приборы в долото не втсавляют" - это у кого как. Поиск на гугле по абривиатуре LWD (Logging while drilling) Вам поможет.

Нет. Это стандартный комплекс ГИС в процессе бурения на кабеле.

Вы хотели сказать в процессе строительства скважины. Впроцессе бурения зонд на долоте это именно LWD.

А требований по срокам проведения ГИС не встречал. В РД ничего не сказано.

Мдя. НАсколько я все-таки понял, речь идет о времени с момента вскрытия пласта долотом и до момента, когда в пласт войдут висящие над долотом зонды LWD. Но какие могут быть тут нормативы. быстрей чем идет долото все-равно прибор в пласт не засунешь )))

Или речь о времени с момента поднятия бур.инструмента до начала ГИС на кабеле?

Как я понимаю имеется ввиду, через какое время необходимо поднимать инструмент и спускать приборы, чтобы качество геофизического материала было наилучшим.
Если так, то не позднее чем через 5 суток после полного вскрытия продуктивной толщи. Если продуктивная толща имеет большую толщину, то рекомендуется проводить изучение в несколько приемов, разделив всю толщу на 200-300 м. (Каналин, Усенко - Геологический котроль проходки скважин)

Речь идёт именно о времени между вскрытием продуктивного пласта, извлечением бурового инструмента и спуском приборов ГИС -- о сроке связанном с формированием \ расформированием "зоны проникновения" фильтратра раствора.
А почему в указанном порядке: "Вскрыли пласт, зона проникновения образовалась, репрессия, бур. инструмент подняли, провели каротаж" между бур. инструмент подняли, провели каротаж не вставить скажем 2-е недели. Вопрос не в том, что плохо это или хорошо, меня интересует РЕГЛАМЕНТИРОВАННО или нет :-)
Зонды на долоте в данном случае не рассматриваются.

Исследование проводят методом посева на плотные питательные среды с использованием прибора WASP, Copan, Италия. Идентификацию микроорганизмов проводят методом масс-спектрометрии с помощью прибора Microflex Brucker Daltonik MALDI Biotyper, BRUKER, Германия. Определение чувствительности к антимикробным препаратам проводят диско-диффузионным методом с использованием анализатора ADAGIO, BIO-RAD, Франция; определение чувствительности к бактериофагам – путем посева бактериальной культуры на плотную питательную среду с последующим нанесением бактериофага.

Синонимы: Upper Respiratory Culture,Routine. Bacteria Identification. Antibiotic Susceptibility and Bacteriophage Efficiency testing.

Поражение носа (ринит, синусит), слизистой оболочки глотки (фарингит) нередко обусловлены бактериальной инфекцией, в основном пневмококком, стафилококом (ринит), гемолитическим стрептококком (фарингит).

Данный метод включает в себя качественное и полуколичественное бактериологическое исследование биоматериала с целью выделения и идентификации этиологически значимых микроорганизмов − возбудителей заболеваний верхних дыхательных путей − с определением чувствительности выделенных патогенов к антимикробным препаратам (антибиотикам) и бактериофагам.

Антибиотики относятся к лекарственным препаратам, эффективность которых является наиболее очевидной для лечения бактериальной инфекции. Основным ограничением эффективности антимикробных препаратов является способность микроорганизмов формировать устойчивость (резистентность) к их действию. Этот естественный процесс многократно ускоряется при необоснованном и избыточном применении антимикробных препаратов в качестве средств профилактики в медицине, средств самолечения широкими кругами населения.

Учитывая наличие указанных проблем, антимикробный препарат следует назначать только при наличии обоснованных показаний (документированная или предполагаемая бактериальная инфекция) и с учетом результатов определения чувствительности к нему выделенного возбудителя.

В ряде случаев, в условиях растущей антибиотикорезистентности, а также для пациентов, имеющих противопоказания к приему антибиотиков, актуальной альтернативой антибактериальным препаратам служат бактериофаги. В медицине используют их способность разрушать клетки болезнетворных микроорганизмов. Литическое действие бактериофагов строго специфично. В производстве фаговых препаратов учитывают специфичность бактериофагов и готовят поливалентные фаговые препараты – смеси бактериофагов, активных в отношении различных типов возбудителей. При применении бактериофаги не нарушают нормального биоценоза человека, могут применяться в комплексной терапии с другими лекарственными средствами. Бактериофаги не вызывают дисбиоз, аллергию, не подавляют иммунную систему; разрешены к применению у детей с 0 месяцев, у беременных и в период лактации. При необходимости использования бактериофагов в лечебных и/или профилактических целях необходимо проводить оценку чувствительности к ним возбудителя.

условно-патогенные микроорганизмы: Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae, Branchamella catarrhalis, Streptococcus pyogenes, Staphylococcus aureus; грамотрицательные бактерии семейства энтеробактерий;
грибы рода кандида (Candida albicans и др.);
представители нормальной флоры: зеленящие стрептококки (Streptococcus viridans group), коагулазонегативные стафилококки (Staphylococcus еpidermidis), непатогенные нейссерии (Neisseria spр.), непатогенные дифтероиды (Corynebacterium spр.), и некоторые другие.

С какой целью проводят посев отделяемого верхних дыхательных путей на микрофлору, определение чувствительности к антимикробным препаратам и бактериофагам

Посев биоматериала проводят с целью выделения и идентификации этиологически значимых микроорганизмов − возбудителей заболеваний верхних дыхательных путей, а также для определения чувствительности выделенных патогенов к антибиотикам и бактериофагам.

Квалифицированное бактериологическое исследование (бак посев) позволяет оценить весь состав аэробной и микроаэрофильной микрофлоры в исследуемом материале. Каковы методики проведения этого лабораторного анализа? Они могут варьировать в зависимости от цели диагностического исследования, исследуемого материала, подозрения на тот или иной возбудитель.

Следует отличать бак.посев от других видов бактериологического исследования, в частности от микроскопии мазка. Задача микроскопии – визуально обнаружить клетки микроорганизмов в исследуемом материале (мазке). Задача посева – получить колонии возбудителя на питательных средах, и тем самым обнаружить его. Микроскопия – экспресс-метод, позволяет довольно быстро получить результаты. Однако точность этого метода (чувствительность) гораздо ниже, чем бак.посева. Микроскопия позволяет лишь примерно определить тип возбудителя – кокки, палочки, дрожжи. Бак. посев в свою очередь позволяет точно определить вид микроорганизма, его количество, и чувствительность к лекарственным препаратам.

Содержимое абсцессов, папул, везикул и т.д. отбирают обычно шприцем, соблюдая правила асептики. Жидкий материал (мочу, сперму, грудное молоко и т.д.) отбирают в стерильные контейнеры с резьбовой крышкой. Такой материал должен быть доставлен для исследования в лабораторию в тот же день, его хранение не допускается. Пересылка материала для бак посева должна осуществляться в термоизолированных сумках.

В бактериологической лаборатории проводят посев клинического материала на питательные среды, после чего посевы инкубируют в определенных условиях. Важно, чтобы использовались качественные стандартизованные питательные среды, предпочтительно известных производителей. В различных диагностических лабораториях используют различные алгоритмы посева. Оптимально, когда материал высевают на набор различных сред, обеспечивающих рост всех групп патогенных микроорганизмов. Обычно используют специальные дифференциально-диагностические среды, на которых опытный микробиолог практически сразу может определить вид возбудителя, и дополнительные тесты уже не нужны. Хотя такие среды довольно дороги, они позволяют существенно сократить время исследования. Если вид микроорганизма таким образом определить не удается, проводят его идентификацию с помощью дополнительных биохимических тестов.

Условия выращивания бактериологических посевов также играют большую роль. Должна поддерживаться оптимальная температура; определенные микроорганизмы требовательны к содержанию углекислого газа, а некоторые нуждаются в анаэробных (безкислородных) условиях. Все эти факторы должны учитываться специалистами лаборатории.

Когда выращивание посевов закончено, определяют вид выделенных микроорганизмов, и подсчитывают количество выросших колоний. Это дает представление о количественном содержании микроба в клиническом материале, что имеет определенное диагностическое значение.

Чувствительность к антибиотикам обычно определяют диско-диффузионным методом. На поверхность питательной среды вносят взвесь микробных клеток, а сверху помещают диски, пропитанные антибиотиками. Посевы выращивают, и затем учитывают зоны подавления роста микроба вокруг дисков. Измеряют диаметр этих зон, и в зависимости от этого относят микроорганизм к одной из трех групп – чувствительный, устойчивый, промежуточный.

Наборы антибиотиков, к которым определяется чувствительность, варьируют у разных лабораторий. Обычно используют разные наборы для разных групп микроорганизмов – грамположительных и грамотрицательных. Помимо этого, у выделенных стафилококков определяют метициллинрезистентность (выявление МРС), наличие которой свидетельствует о резистентности ко всем бета-лактамным антибиотикам. У грамотрицательных микроорганизмов (родов Escherichia, Klebsiella, Pseudomonas и др.) выявляют наличие БЛРС (бета-лактамаз расширенного спектра), что свидетельствует о резистентности ко всем пенициллинам и цефалоспоринам I-IV поколений. Все эти сведения указываются в ответе лаборатории.

Следует отметить, что обнаружение того или иного микроба не всегда говорит о его этиологической роли. Хотя бак.посев является ценнейшим диагностическим методом, диагноз должен ставиться на основании комплекса анамнестических и диагностических данных.

В результате такого исследования врач и пациент получают наиболее полное представление о микробной флоре пациента, а также о средствах терапии – у выделенных микроорганизмов определяется чувствительность к антибиотикам (антмикотикам) и бактериофагам. Это наиболее достоверный и информативный метод микробиологического исследования, который позволяет назначить оптимальное лечение. Заменить такое исследование пока не могут даже самые современные методы вроде ПЦР.

Таким образом, время, затраченное на комплексное микробиологическое исследование, полностью себя оправдывает.

Читайте также: