Основной способ метода контроля стерильности операционной посев

Добавил пользователь Алексей Ф.
Обновлено: 19.09.2024

Все действия по обработке и стерилизации инструментов, белья и прочего подлежат обязательному контролю. Контролируют как эффективность стерилизации, так и качество предстерилизационной подготовки.

Контроль стерильности.

Методы контроля стерильности делят на прямой и непрямые.

Прямой метод контроля стерильности – бактериологическое исследование: специальной стерильной палочкой проводят по стерильным инструментам (коже рук хирурга или операционного поля, операционному белью и пр.), после чего помещают её в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию, где проводят посев на различные питательные среды и таким образом определяют бактериальную загрязнённость. Бактериологический метод контроля стерильности наиболее точен. Отрицательный момент – длительность проведения исследования: результат посева бывает готов лишь через 3 – 5 сут, а использовать инструменты нужно непосредственно после стерилизации. Поэтому бактериологическое исследование проводят в плановом порядке и по его результатам судят о методических погрешностях в работе медперсонала или в дефектах используемого оборудования. По существующим нормативам, несколько различающимся для разного вида инструментария, бактериологическое исследование необходимо проводить 1 раз в 7 – 10 дней. Кроме того, в 2 раза в год подобное исследования во всех подразделениях больницы проводят районные и городские санитарно - эпидемиологические службы. Непрямые методы – контроля используют в основном при термических способах стерилизации. С их помощью можно определить величину температуры, при которой проводили обработку, не давая точный ответ на вопрос о присутствии или отсутствии микрофлоры. Преимущество непрямых методов в быстроте получения результатов и возможности их использования при каждой стерилизации. При автоклавировании в бикс обычно укладывают ампулу (пробирку) с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления в пределах 110 – 120 о C. После стерилизации при открытии бикса сестра прежде всего обращает внимание на эту ампулу: если вещество расплавилось, то материал (инструменты) можно считать стерильными, если же нет – нагревание было недостаточным и пользоваться таким материалом нельзя, так как он нестерилен. Для подобного метода наиболее часто используют бензойную кислоту (температура плавления 120 о C), резоцирин (температура плавления 119 о C), антипирин (температура плавления 110 о C). Вместо ампулы в бикс можно поместить термоиндикатор или максимальный термометр, по которому также можно определить, какова была температура во время обработки. Аналогичные непрямые способы используют при стерилизации в сухожаровом шкафу. Однако здесь применяют вещества с более высокой температурой плавления (аскорбиновая кислота – 190 о C, янтарная кислота -190 о C, тиомочевина - 180 о C), другие термоиндикаторы или термометры.

Контроль стерилизации материала проводится двумя способами.

Прямой способ контроля стерилизации – бактериологический

Посев с перевязочного материала и белья или использование бактериологических тестов. Посев производят следующим образом: в операционной вскрывают бикс, маленькими кусочками марли, увлажненной изотоническим раствором хлорида натрия, несколько раз проводят по белью, после чего кусочки марли опускают в пробирку, которую направляют в бактериологическую лабораторию. Для бактериологических тестов используют пробирки с известной спороносной непатогенной культурой микроорганизмов, которые погибают при определенной температуре. Пробирки вкладывают вглубь бикса, по окончании стерилизации извлекают и направляют в лабораторию. Отсутствие роста микробов свидетельствует о стерильности материала. Прямой метод используется для периодического контроля один раз в 7-10 дней.

Непрямой способ контроля стерилизации

Данный способ контроля стерильности материала применяют постоянно при каждой стерилизации: для этого используют вещества с определенной точкой плавления: бензойную кислоту (120°С), резорцин (119°С), антипирин (110°С). Пробирки с тугоплавким веществом помещают в центре у дна бикса и вверху бикса. В последнее время контроль стерилизации проводится бумажным индикатором, цвет которого меняется от белого до фиолетового при температуре более 130-132°С. В сухожаровых стерилизаторах используют порошкообразные вещества с более высокой точкой плавления: аскорбиновую кислоту (187-192°С), янтарную кислоту (180-184°С), пилокарпина гидрохлорид (200°С), тиомочевину (180°С).

· Пробы крови следует получать путём венепункции перефирических вен (чаще всего вены локтевого изгиба), как детям, так и взрослым.

· Объём крови необходимый для посева: у взрослых следует взять 10 мл крови, у детей 0,1-4,0 мл.

· С верха пробки необходимо снять пластиковую защитную пластину, обработать её салфеткой, смоченной 70% этанолом и дать высохнуть.

· Участок кожи над сосудом, выбранным для пункции, обработать салфеткой, смоченной 70% этанолом, или другим антисептиком, разрешенным к применению для этих целей в установленном порядке, круговыми движениями начиная от центра, на протяжении 30 секунд.

· Подождать, пока высохнет обработанный участок.

Процедура посева при заборе крови при помощи шприца

· Выполнить венепункцию и перенести кровь во флакон сменив иглу и спустив из нее воздух.

· Если необходимо выявить аэробные и анаэробные микроорганизмы, то кровь следует внести сначала в анаэробную ёмкость, а потом в аэробную для того что бы кислород , который накопился в шприце не попал во флакон для анаэробов;

· При заполнении флакона необходимо ориентироваться на метку объёма на этикетке. При достижении необходимого объёма заполнения следует удалить шприц, поскольку через вакуум автоматически отберётся количество более рекомендуемого максимума. Для избежания нарушения вакуума необходимо прокалывать пробку флакона в вертикальном положении.

· Место прокола сосуда заклеить лейкопластырем, после этого пациенту слудет согнуть руку в локте.

Процедура посева при непосредственном отборе крови путём венепункции.

· Отберите кровь при помощи системы забора крови с иглой-бабочкой и адаптером для взятия крови во флакон для культивирования.

· При одновременном посеве во флакон для культур крови BacT/ALERT нескольких типов (с использованием систем забора крови с иглой-бабочкой и адаптера для непосредственного отбора крови) сначала, необходимо вносить образец во флакон для выделения аэробных микроорганизмов, а потом - для выделения анаэробных организмов, что бы кислород, который накопился в трубке, не попал во флакон для выделения анаэробных микроорганизмов.

· Что бы избежать посева чрезмерного объёма, отслеживайте объём крови который набирается во флакон. Для наполнения флакона приблизительно на 10 мл ориентируйтесь по линии уровня заполнения на этикетке флакона, или же при помощи метки объёма с шагом 5 мл на этикетке флакона для оценки объёма внесённого образца.

· В ходе всей процедуры тщательно контролируйте процесс непосредственного отбора, обеспечивая надлежащий поток и не допуская попадания содержимого флакона в трубку адаптера. Поскольку во флаконе для культивирования содержатся химические добавки, важно следовать указанной выше пошаговой процедуре, что бы не допустить возможный обратный поток.

· Держите флакон для культвирования ниже руки пациента в вертикальном положении (пробкой вверх).

· Отпустите жгут, как только кровь начнёт поступать во флакон для культивирования, или на протяжении 1 минуты после его наложения.

· Проследите за тем, что бы содержимое флакона не касалось пробки или конца иглы во время забора крови

· Место прокола сосуда заклеить лейкопластырем, после, пациенту следует согнуть руку в локте.

Особенности посева крови у детей.

· Посев осуществляется по методикам описаными выше, во флаконы с зеленой крышкой.

· Рекомендованый объём крови 4,0 мл. Минимальный объём крови 0,1 мл.

· При заполнении флакона необходимо ориентироваться на метку объёма 4,0 мл на этикетке.

Не допускается:

· Пальпирование сосуда после обработки кожи перед введением иглы.

· Вдавливания поршня шприца с усилием при выполнении посева, так как может произойти разбрызгивание образца.

· Осуществление посева во флакон с нарушенным вакуумом.

Спинномозговая (ликвор), синовиальная, плевральная и другие стерильные жидкости.

· Перед проведением пункции и чрескожной аспирации следует тщательно очистить выбранный участок кожи 70% этанолом; продезинфицировать 1-2% раствором йода или другим дезинфектантом, разрешенным к применению для данных целей, для предотвращения инфекции. Избыток йода удалить марлевой салфеткой, смоченной 70% этанолом, чтобы избежать ожога кожи пациента.

· Ликвор получают путем люмбальной пункции с субарахноидального пространства между позвонками L3 - L4, L4 - L5 или L5 - S1, а также путем пункции боковых желудочков мозга и вносят во флакон со средой.

· Соблюдая правила асептики, выполняют чрескожная аспирация для получения проб плевральной, перикардиальной, перитонеальной или синовиальной жидкости. Полученную жидкость вносят во флакон.

Отбор стерильных жидкостей и биоптатов для посева на мицелиальные грибы.

· Кровь отбирают 2 раза в день в течение 2 дней.

· Отбор крови должен проводиться двумя медицинскими работниками в процедурном кабинете или у постели больного.

· Пробы крови следует получать путем венепункции периферических вен (чаще всего вены локтевого сгиба), у новорожденных - из пятки.

· Подождать, пока высохнет обработанный участок.

· Первый работник выполняет венепункцию. Второй работник, у пламени спиртовой горелки открывает флакон. Первый - вносит кровь во флакон со средой Сабуро, второй - закрывает флакон.

· Место прокола заклеить лейкопластырем, после чего пациенту следует согнуть руку в локте.

Не допускается:

Пальпация сосудов после обработки кожи перед введением иглы.

Грибок (микоз) кожи – группа заболеваний, поражающих грибковой инфекцией кожу и ее придатки (потовые и сальные железы, волосы и ногти). Грибок распространен среди всех возрастных групп и может п..

Неужели нас снова ждёт мир, где любая операция или открытый перелом грозят гибелью? В прошлый раз мы писали про природную резистентность бактерий, теперь рассмотрим, что же такое приобретенная..

Бытует мнение, что диагностика онихомикоза не представляет особых проблем, а для постановки предварительного диагноза достаточно одного осмотра. Однако под маской грибка ногтей могут скрываться и друг..

Продолжаем разбираться какие бывают жиры и чего от них ожидать. Сегодня поговорим о ненасыщенных жирах (они же жидкие). Ненасыщенные жирные кислоты – это жирные кислоты, структурная цепь которых, н..

Приблизительно от 350 до 400 грибных метаболитов считаются токсичными, и это, не учитывая грибные токсины. Наиболее известными микотоксинами являются:• Афлатоксины (синтезируют грибки рода Aspergillus..

Ми уже говорили о том, что грибки обитают повсюду, и ванная комната не исключение. Повышенная влажность создает идеальные условия для их роста. Однако, вопреки бытующему мнению, что в ванной могут рас..

Грибковые поражения кожи, ногтей и волос в теплое время года не редкость. В основном они обусловлены дерматофитами - видами грибов, которые питаются кератином. Именно они являются причиной разноцветно..

Мы все стремимся обустроить наше жилье как можно более уютно, но порой не обращаем внимание на мелочи, которые наносят огромный вред здоровью.Речь идет о черной плесени, - этот вид грибов встречается ..

Здоровье – это история про баланс. Не бывает исключительно хороших или плохих бактерий, грибков и других микроорганизмов, более того, многие из них сопровождают человека от самого рождения. При наруше..

Думаю, каждый из вас слышал о вреде транс-жиров, что же, давайте разберем, что же с ними не так. Транс-жиры (они же гидрогенизированные жиры) – единственный нутриент, которые медики и ученые призна..

В отличие от других грибов, дерматофиты могут вызывать инфекции у здоровых, иммунокомпетентных людей. По оценкам, от 30 до 70% взрослых являются бессимптомными носителями этих грибов.Trichophyton rubr..

Микологам известно около 3 миллионов видов грибов, но многие из них еще предстоит открыть. Грибы существуют очень давно: самая старая окаменелость грибов имеет возраст около одного миллиарда лет. Были..

Контроль за стерильностью материала проводится двумя способами.

прямой способ - бактериологический; посев с перевязочного материала и белья или использование бактериологических тестов. Посев производят следующим образом:
в операционной вскрывают бикс, маленькими кусочками марли, увлажненной изотоническим раствором хлорида натрия, несколько раз проводят по белью, после чего кусочки марли опускают в пробирку, которую направляют в бактериологическую лабораторию.
Для бактериологических тестов используют пробирки с известной спороносной непатогенной культурой микроорганизмов, которые погибают при определенной температуре.
Пробирки вкладывают вглубь бикса, по окончании стерилизации извлекают и направляют в лабораторию. Отсутствие роста микробов свидетельствует о стерильности материала. Прямой метод используется для периодического контроля один раз в 7-10 дней.
непрямой способ контроля стерильности материала применяют постоянно при каждой стерилизации:
для этого используют вещества с определенной точкой плавления: бензойную кислоту (120°С), резорцин (119°С), антипирин (110°С). Пробирки с тугоплавким веществом помещают в центре у дна бикса и вверху бикса.
В последнее время используют бумажный индикаторный контроль, цвет которого меняется от белого до фиолетового при температуре более 130-132°С.
В сухожаровых стерилизаторах используют порошкообразные вещества с более высокой точкой плавления: аскорбиновую кислоту (187-192°С), янтарную кислоту (180-184°С), пилокарпина гидрохлорид (200°С), тиомочевину (180°С).

18. Санитарно-противоэпидемический режим в отделении. Дезинфекция. Понятие, виды, методы, режимы дезинфекции. Основные группы дез.средств. Регламентирующие документы.

Дезинфекция - совокупность способов полного, частичного или селективного уничтожения вегетативных патогенных для человека микроорганизмов на объектах внешней среды и на изделиях медицинского назначения. Является одним из значимых направлений профилактики ВБИ.

Виды дезинфекции:

1.профилактическая(проводится постоянно в отсутствии больных с целью предотвращения распространения возбудителей инфекционных заболеваний в ЛПУ.) ,

2.очаговая(чаговую дезинфекцию проводят в случае возникновения инфекционных заболеваний или подозрения на них):

1) текущая-это дезинфекция в непосредственном окружении больного или бацилловыделителя, проводимая с целью рассеивания возбудителя инфекционных заболеваний в окружающей среде.

2) заключительная-то предупреждение распространения возбудителей инфекционных заболеваний через объекты, бывшие в контакте с больным. В отличие от текущей дезинфекции, она, как правило, проводится однократно после выздоровления, изоляции инфекционного больного, а также в случае его смерти дома.

Для проведения дезинфекции используют следующие методы:

1. Механический. Основан на удалении патогенных микробов путем обмывания, вытряхивания, промывания с использованием мыла и синтетических моющих средств.

2. Физический. Основан на уничтожении или удалении патогенных микроорганизмов с поверхности предметов, подлежащих обеззараживанию путем воздействия ряда физических факторов.

o Действия высоких температур: обжигания, прокаливания; кипячения, пастеризации; действия горячего воздуха, высушивания.

o Действия лучистой энергии: ультрафиолетового излучения; радиоактивного и ионизирующего излучения; тока ультравысокой частоты.

3. Химический. Основан на использовании различных химических веществ. Наиболее часто применяют водные растворы. Химические методы дезинфекции применяют для изделий из стекла, коррозионностойких металлов, полимерных материалов, резины.

Все дезинфектанты можно разделить на 9 основных групп химических соединений:

В соответствие с 165-м приказом в каждом УЗ должен быть произведен расчет потребности в дезинфекционных препаратах, и обеспечить неснижаемый месячный запас дез. средств, а так же смена дез. средств один раз в квартал.

19, 20Санитарно-противоэпидемический режим в отделении:дезинфекция. Дезинфекция предметов ухода за пациентом способом полного погружения (судно, мочеприёмник, клеёнка и т.д.). Дезинфекция предметов ухода за пациентом способом двукратного протирания (пузырь для льда, грелка, термометр и т.д.).

Оснащение: спецодежда, использованный предмет ухода; дезинфицирующее средство (концентрация р-ра, экспозиция и способ обработки выбираются в зависимости от наличия крови и биологических выделений пациента на предметах ухода); ветошь — 2 шт.; емкость для дезинфекции с крышкой и маркировкой. Обязательное условие: предметы ухода дезинфицируются сразу после использования.

Подготовка к процедуре

1. Надеть спецодежду, перчатки.

2. Подготовить оснащение.

3. Залить в емкость дезинфицирующий р-р нужной концентрации.

4. Выполнить процедуру с использованием предмета ухода.

Выполнение дезинфекции методом полного погружения:

5. Погрузить полностью предмет ухода, заполняя его полости дезинфицирующим р-ром).

6. Снять перчатки.

7. Отметить время начала дезинфекции.

8. Выдержать 60 мин (или необходимое время процесса дезинфекции данным средством).

9. Надеть перчатки.

10. Вымыть предмет ухода под проточной водой, используя моющие средства, высушить.

11. Вылить дезинфицирующий р-р в раковину (канализацию).

12. Хранить предмет ухода в специально, отведенном месте.

13. Снять спецодежду, вымыть и осушить руки.

© 2014-2022 — Студопедия.Нет — Информационный студенческий ресурс. Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав (0.005)

Читайте также: